| 中文摘要 | 第4-10页 |
| Abstract | 第10-16页 |
| 英文缩写词 | 第19-20页 |
| 第一章 绪论 | 第20-46页 |
| 1.1 自噬概述 | 第20-24页 |
| 1.1.1 自噬 | 第20-22页 |
| 1.1.2 电离辐射诱导自噬 | 第22-24页 |
| 1.2 自噬与乳腺癌 | 第24-28页 |
| 1.2.1 自噬在乳腺癌中的调控作用 | 第24-25页 |
| 1.2.2 乳腺肿瘤细胞自噬性细胞死亡的途径 | 第25-28页 |
| 1.3 调控自噬的基因 | 第28-44页 |
| 1.3.1 p53和自噬 | 第28-29页 |
| 1.3.2 Beclin-1 与自噬 | 第29-32页 |
| 1.3.3 磷酸酰肌醇-3 激酶与自噬 | 第32-34页 |
| 1.3.4 STAT3和自噬 | 第34-39页 |
| 1.3.5 TP53INP1基因 | 第39-44页 |
| 1.4 立题依据 | 第44-46页 |
| 第二章 材料与方法 | 第46-64页 |
| 2.1 主要试剂与仪器设备 | 第46-48页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第46-48页 |
| 2.1.2 主要仪器设备 | 第48页 |
| 2.2 主要实验方法 | 第48-64页 |
| 2.2.1 细胞株 | 第48-49页 |
| 2.2.2 细胞照射条件 | 第49页 |
| 2.2.3 构建细胞模型 | 第49-52页 |
| 2.2.4 瞬间转染si RNA | 第52页 |
| 2.2.5 Real-time RT-PCR | 第52-54页 |
| 2.2.6 PCR | 第54-55页 |
| 2.2.7 蛋白质免疫印记法(Western blot) | 第55-56页 |
| 2.2.8 CCK8(Cell counting Kit-8)实验 | 第56-57页 |
| 2.2.9 集落形成实验 | 第57页 |
| 2.2.10 流式细胞数定量检测细胞凋亡 | 第57-58页 |
| 2.2.11 MDC染色流式细胞术分析 | 第58-59页 |
| 2.2.12 免疫荧光法 | 第59页 |
| 2.2.13 免疫共沉淀（IP） | 第59-60页 |
| 2.2.14 染色质免疫沉淀（CHIP） | 第60-62页 |
| 2.2.15 统计学处理 | 第62-64页 |
| 第三章 实验结果 | 第64-88页 |
| 3.1 电离辐射诱导乳腺癌MCF-7 细胞发生自噬性死亡 | 第64-71页 |
| 3.1.1 电离辐射诱导乳腺癌MCF-7 细胞自噬 | 第64-68页 |
| 3.1.2 电离辐射诱导MCF-7 细胞自噬性死亡 | 第68-71页 |
| 3.2 TP53INP1参与电离辐射可诱导的细胞自噬 | 第71-78页 |
| 3.2.1 电离辐射可引起TP53INP1表达增加 | 第71-72页 |
| 3.2.2 TP53INP1参与电离辐射诱导的自噬 | 第72-78页 |
| 3.3 电离辐射后TP53INP1与p53存在相互作用 | 第78-81页 |
| 3.3.1 免疫荧光法显示电离辐射后TP53INP1与p53存在共定位 | 第78-79页 |
| 3.3.2 IP 实验证实电离辐射后TP53INP1与p53存在相互作用 | 第79-80页 |
| 3.3.3 电离辐射后沉默p53基因TP53INP1的表达变化不显著 | 第80-81页 |
| 3.4 TP53INP1与STAT3之间存在相互作用 | 第81-88页 |
| 3.4.1 基因芯片结果分析表明TP53INP1可引起STAT3的改变 | 第81-83页 |
| 3.4.2 TP53INP1与STAT3之间存在相互作用 | 第83-88页 |
| 第四章 讨论 | 第88-96页 |
| 第五章 结论 | 第96-98页 |
| 参考文献 | 第98-122页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第122-123页 |
| 致谢 | 第123页 |
