| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-21页 |
| 1.1 立题依据与意义 | 第10页 |
| 1.2 研究内容和目标 | 第10-11页 |
| 1.3 技术路线 | 第11-12页 |
| 1.4 植物叶色突变体的研究概况 | 第12-14页 |
| 1.4.1 植物叶色突变体的来源和分类 | 第12-13页 |
| 1.4.2 叶色突变的遗传方式 | 第13页 |
| 1.4.3 植物叶色突变的研究进展及应用 | 第13-14页 |
| 1.5 类病斑突变体的研究进展 | 第14-17页 |
| 1.5.1 小麦类病斑突变体的研究进展 | 第14-15页 |
| 1.5.2 类病斑的产生机制 | 第15-16页 |
| 1.5.3 类病斑突变体的应用前景 | 第16-17页 |
| 1.6 小麦基因定位的研究进展 | 第17-21页 |
| 1.6.1 分子标记技术的研究进展 | 第17-19页 |
| 1.6.2 小麦类病斑基因定位的研究进展 | 第19-21页 |
| 第二章 小麦白斑突变体I30的生理特性研究 | 第21-32页 |
| 2.1 材料与方法 | 第21-23页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第21页 |
| 2.1.2 突变体的表型鉴定 | 第21页 |
| 2.1.3 突变体温度敏感性检测 | 第21页 |
| 2.1.4 细胞化学组织染色 | 第21页 |
| 2.1.5 透射电镜观察突变体的叶绿体超微结构 | 第21-22页 |
| 2.1.6 突变体的光合特性变化 | 第22-23页 |
| 2.1.7 生理活性测量 | 第23页 |
| 2.1.8 农艺性状分析 | 第23页 |
| 2.1.9 突变体I30的抗病性鉴定 | 第23页 |
| 2.2 结果与分析 | 第23-30页 |
| 2.2.1 突变体I30的表型观察 | 第23-24页 |
| 2.2.2 突变体I30的温度敏感性 | 第24页 |
| 2.2.3 组织化学染色 | 第24-25页 |
| 2.2.4 突变体I30的叶绿体超微结构变化 | 第25-26页 |
| 2.2.5 突变体I30的光合特性分析 | 第26-27页 |
| 2.2.6 突变体I30的生理活性分析 | 第27-29页 |
| 2.2.7 突变体I30的农艺性状分析 | 第29页 |
| 2.2.8 突变体I30的抗病性 | 第29-30页 |
| 2.3 讨论 | 第30-32页 |
| 2.3.1 I30突变体是研究小麦光合作用的重要材料 | 第30页 |
| 2.3.2 小麦白斑突变体I30的产量降低的原因 | 第30-31页 |
| 2.3.3 类病斑突变体的抗病性机制 | 第31页 |
| 2.3.4 突变体I30的生理变化原因 | 第31-32页 |
| 第三章 突变体I30的遗传分析 | 第32-41页 |
| 3.1 材料与方法 | 第32-36页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第32页 |
| 3.1.2 DNA提取使用的试剂 | 第32页 |
| 3.1.3 CTAB法提取基因组DNA （Rogers et al.1985） | 第32-33页 |
| 3.1.4 BSA（Bulked segregant analysis）混池的构建和芯片检测 | 第33页 |
| 3.1.5 0.8%琼脂糖凝胶电泳步骤 | 第33页 |
| 3.1.6 小麦SSR分子标记的PCR反应 | 第33-34页 |
| 3.1.7 6%变性聚丙烯酰胺凝胶电泳所用试剂 | 第34-35页 |
| 3.1.8 6%变性聚丙烯酰胺凝胶电泳检测PCR产物的步骤 | 第35页 |
| 3.1.9 基因分型与制作遗传图谱 | 第35-36页 |
| 3.2 结果与分析 | 第36-38页 |
| 3.2.1 遗传分析 | 第36页 |
| 3.2.2 660K基因芯片结果 | 第36-37页 |
| 3.2.3 I30突变基因定位 | 第37-38页 |
| 3.3 讨论 | 第38-41页 |
| 3.3.1 突变体I30是一个新的小麦类病斑突变体 | 第38-39页 |
| 3.3.2 小麦类病斑突变基因 | 第39页 |
| 3.3.3 BSA＋基因芯片进行基因定位的可行性 | 第39-41页 |
| 第四章 结论 | 第41-42页 |
| 4.1 小麦白斑突变体I30的特征特性 | 第41页 |
| 4.2 小麦白斑突变体I30的遗传分析 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-47页 |
| 附录 | 第47-49页 |
| 致谢 | 第49-50页 |
| 作者简介 | 第50页 |
