| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 1 绪论 | 第12-20页 |
| 1.1 溴代阻燃剂概况 | 第12页 |
| 1.2 四溴双酚A的主要性质和对环境的影响 | 第12-14页 |
| 1.2.1 四溴双酚A的主要性质 | 第12-13页 |
| 1.2.2 四溴双酚A的分布及其影响 | 第13-14页 |
| 1.3 四溴双酚A的降解研究 | 第14-17页 |
| 1.3.1 四溴双酚A的生物降解技术 | 第14-16页 |
| 1.3.2 四溴双酚A的光降解技术 | 第16页 |
| 1.3.3 四溴双酚A的催化氧化降解技术 | 第16页 |
| 1.3.4 四溴双酚A的其他降解技术 | 第16-17页 |
| 1.4 课题的主要研究内容 | 第17-20页 |
| 1.4.1 课题来源及研究意义 | 第17-18页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第18页 |
| 1.4.3 研究的技术路线 | 第18-20页 |
| 2 四溴双酚A厌氧降解菌驯化系统的建立 | 第20-28页 |
| 2.1 材料与方法 | 第20-25页 |
| 2.1.1 试验仪器设备与药品 | 第20-24页 |
| 2.1.2 试验材料来源 | 第24页 |
| 2.1.3 四溴双酚A的分析方法 | 第24-25页 |
| 2.1.4 液体培养基的配制 | 第25页 |
| 2.2 四溴双酚A厌氧降解菌驯化系统的建立 | 第25-27页 |
| 2.2.1 驯化系统的建立 | 第25-26页 |
| 2.2.2 驯化前后反应器中污泥对四溴双酚A降解效果比较 | 第26-27页 |
| 2.3 本章小结 | 第27-28页 |
| 3 四溴双酚A厌氧降解菌的分离、纯化研究 | 第28-34页 |
| 3.1 材料和方法 | 第28-29页 |
| 3.1.1 菌液的来源 | 第28页 |
| 3.1.2 培养基的配制 | 第28-29页 |
| 3.2 四溴双酚A厌氧降解菌的富集培养、分离、纯化和筛选 | 第29-32页 |
| 3.2.1 富集培养 | 第29页 |
| 3.2.2 分离和纯化 | 第29-31页 |
| 3.2.3 四溴双酚A厌氧降解菌的筛选 | 第31-32页 |
| 3.3 本章小结 | 第32-34页 |
| 4 四溴双酚A厌氧降解菌的鉴别 | 第34-48页 |
| 4.1 四溴双酚A降解菌的形态学特征 | 第34-38页 |
| 4.1.1 试验用细菌菌液的制备 | 第34页 |
| 4.1.2 菌落形态分析 | 第34-35页 |
| 4.1.3 革兰氏染色 | 第35-36页 |
| 4.1.4 扫描电子显微镜观察 | 第36-38页 |
| 4.2 四溴双酚A厌氧降解菌的16S rDNA分析 | 第38-44页 |
| 4.2.1 试验所用基础材料 | 第38页 |
| 4.2.2 DNA的提取 | 第38-40页 |
| 4.2.3 PCR扩增 | 第40-41页 |
| 4.2.4 测序 | 第41页 |
| 4.2.5 NJUST20和NJUST21的16S rDNA序列分析 | 第41-44页 |
| 4.3 NJUST20的生物化学特性 | 第44-47页 |
| 4.4 本章小结 | 第47-48页 |
| 5 NJUST20的最佳降解条件探究及降解途径分析 | 第48-58页 |
| 5.1 NJUST20的最佳降解条件探究 | 第48-50页 |
| 5.1.1 菌液的制备 | 第48页 |
| 5.1.2 温度对NJUST20降解四溴双酚A的影响 | 第48-49页 |
| 5.1.3 pH对NJUST20降解四溴双酚A的影响 | 第49页 |
| 5.1.4 NJUST20降解四溴双酚A的动力学研究 | 第49-50页 |
| 5.2 NJUST20厌氧降解四溴双酚A的降解途径分析 | 第50-55页 |
| 5.2.1 高效液相色谱对降解产物的分析 | 第51页 |
| 5.2.2 气质联用仪对降解产物的分析 | 第51-54页 |
| 5.2.3 降解途径的分析 | 第54-55页 |
| 5.3 本章小结 | 第55-58页 |
| 6 结论 | 第58-61页 |
| 6.1 主要结论 | 第58-59页 |
| 6.2 课题创新点 | 第59页 |
| 6.3 建议 | 第59-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-67页 |
| 附录Ⅰ 两株菌株的16S rDNA序列 | 第67-69页 |
| 附录Ⅱ | 第69页 |
