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GAPCs在细胞自噬和植物免疫中的功能研究

摘要第3-4页
Abstract第4页
第1章 前言第11-27页
    1.1 细胞自噬第11页
    1.2 植物细胞自噬的分子机制第11-16页
        1.2.1 参与植物细胞自噬的保守基因第11-13页
        1.2.2 参与细胞自噬的形成的蛋白组分第13-16页
    1.3 植物细胞自噬的生理功能第16-23页
        1.3.1 植物细胞自噬在植物的生长发育中的功能第16-17页
        1.3.2 植物细胞自噬在植物的衰老中的功能第17-18页
        1.3.3 植物细胞自噬在植物响应非生物胁迫中的功能第18-20页
        1.3.4 植物细胞自噬在植物响应生物胁迫中的功能第20-23页
    1.4 GAPDH是重要的多功能蛋白第23-24页
    1.5 植物中GAPDH的功能研究第24-27页
第2章 材料与方法第27-45页
    2.1 植物材料和生长条件第27页
    2.2 载体构建第27-29页
        2.2.1 功能载体的构建第27-28页
        2.2.2 LIC载体构建第28-29页
    2.3 培养基第29页
    2.4 碱裂解法提取质粒第29页
    2.5 植物DNA的提取第29-30页
    2.6 琼脂糖凝胶回收纯化DNA第30页
    2.7 大肠杆菌感受态的制备第30页
    2.8 大肠杆菌的热激转化第30-31页
    2.9 农杆菌GV3101感受态的制备第31页
    2.10 农杆菌感受态的冻融转化第31页
    2.11 免疫杂交第31-32页
    2.12 烟草总蛋白Pull Down及互作蛋白质谱鉴定第32-34页
        2.12.1 烟草总蛋白Pull Down第32页
        2.12.2 SDS-PAGE胶蛋白电泳第32页
        2.12.3 银染第32-33页
        2.12.4 胶内酶切第33页
        2.12.5 质谱鉴定分析第33-34页
    2.13 荧光素酶互补实验第34页
    2.14 蛋白表达验证以及免疫共沉淀(Co-IP)实验第34-35页
    2.15 体外互作验证(Pull-down)实验第35-36页
    2.16 双分子荧光互补(BiFC)实验第36页
    2.17 细胞自噬观察第36-37页
        2.17.1 CFP-NbATG8f分子标记观察第36页
        2.17.2 MDC染色第36-37页
        2.17.3 电镜观察第37页
        2.17.4 细胞自噬小体的计数第37页
    2.18 植物RNA提取、反转录PCR和实时定量PCR第37-38页
    2.19 MV注射第38页
    2.20 ROS检测第38-39页
        2.20.1 NBT染色第38-39页
        2.20.2 DAB染色第39页
    2.21 病毒诱导基因沉默(VIGS)第39页
    2.22 病毒侵染及荧光拍照第39-40页
    2.23 病原菌生长检测第40页
    2.24 细胞死亡实验第40-41页
        2.24.1 细胞死亡诱导第40页
        2.24.2 台盼蓝染色观察第40-41页
    2.25 引物序列第41-45页
第3章 ATG3体内互作蛋白的筛选第45-50页
    3.1 本章引言第45页
    3.2 结果与分析第45-48页
        3.2.1 ATG3体内互作蛋白筛选与分类第45-47页
        3.2.2 GAPC是ATG3特异的互作蛋白之一第47-48页
    3.3 讨论第48-50页
第4章 ROS负调控GAPCs与ATG3互作第50-62页
    4.1 本章引言第50页
    4.2 结果与分析第50-61页
        4.2.1 GAPCs与ATG3均主要定位在胞质第50-51页
        4.2.2 GAPCs与ATG3存在体内互作第51-53页
        4.2.3 GAPCs与ATG3存在体外直接互作第53-54页
        4.2.4 GAPCs与ATG3互作位于胞质中第54-57页
        4.2.5 GAPCs与ATG3互作受ROS负调控第57-61页
    4.3 讨论第61-62页
第5章 沉默GAPCs激活细胞自噬第62-72页
    5.1 本章引言第62-63页
    5.2 结果分析第63-71页
        5.2.1 本生烟草中沉默GAPCs载体构建和表型观察第63页
        5.2.2 VIGS基因沉默效率检测第63-66页
        5.2.3 在本生烟中沉默GAPCs能够激活细胞自噬第66-69页
        5.2.4 gapc拟南芥突变体中能够观察到细胞自噬激活第69-71页
    5.3 讨论第71-72页
第6章 GAPCs负调控ATG3以及ROS诱导的细胞自噬第72-82页
    6.1 本章引言第72页
    6.2 结果与分析第72-81页
        6.2.1 过表达ATG3可以激活细胞自噬第72-76页
        6.2.2 过表达GAPCs可以抑制ATG3激活的细胞自噬第76-77页
        6.2.3 过表达GAPCs可以抑制ROS激活的细胞自噬第77-80页
        6.2.4 MV处理不影响ATG3的mRNA水平第80-81页
    6.3 讨论第81-82页
第7章 GAPCs参与植物免疫反应第82-88页
    7.1 本章引言第82页
    7.2 结果与分析第82-86页
        7.2.1 沉默GAPCs导致N基因介导的本生烟对TMV-GFP抗性增加第82-83页
        7.2.2 沉默GAPCs导致N基因介导的HR细胞死亡加速第83-84页
        7.2.3 沉默GAPCs导致对寄主病原细菌的抗性增加第84页
        7.2.4 沉默GAPCs导致对非寄主病原细菌的抗性增加第84-85页
        7.2.5 沉默GAPCs不影响非寄主抗性导致的细胞死亡第85-86页
    7.3 讨论第86-88页
第8章 讨论与展望第88-94页
    8.1 讨论第88-93页
        8.1.1 ATG3-GAPCs互作在细胞自噬中的作用第88-91页
        8.1.2 GAPCs在植物抗病性中的作用第91-93页
    8.2 仍待解决的科学问题第93-94页
第9章 其他研究工作第94-104页
    9.1 本章引言第94页
    9.2 结果与讨论第94-104页
        9.2.1 3IP2s主要定位在胞质第94-96页
        9.2.2 3IP2s能够与ATG3在本生烟草中互作第96-98页
        9.2.3 ATG3与 3IP2s互作位于胞质中第98页
        9.2.4 沉默 3IP2s导致依赖于ATG3的细胞自噬激活第98-100页
        9.2.5 沉默 3IP2s导致叶绿体形态受损第100-101页
        9.2.6 过表达 3IP2s导致叶绿体降解加速第101-104页
参考文献第104-114页
致谢第114-115页
个人简历、在学期间发表的学术论文与研究成果第115-116页

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