| 摘要 | 第2-5页 |
| Abstract | 第5-8页 |
| 第一部分 血清MIRNAS在胰岛自身抗体阳性人群中的表达及临床意义的研究 | 第11-33页 |
| 引言 | 第11-14页 |
| 参考文献 | 第13-14页 |
| 1 材料 | 第14-16页 |
| 1.1 一般临床资料选择 | 第14-15页 |
| 1.2 仪器、试剂和耗材 | 第15页 |
| 1.3 试剂的配置 | 第15-16页 |
| 2 方法 | 第16-20页 |
| 2.1 血清样本的收集和处理 | 第16页 |
| 2.2 血清小 RNA 的抽提 | 第16页 |
| 2.3 cDNA 的合成 | 第16-17页 |
| 2.4 预扩增 | 第17页 |
| 2.5 TaqMan 低密度芯片 | 第17页 |
| 2.6 miRNA quantitative Real-Time PCR 反应 | 第17-19页 |
| 2.7 统计学方法分析及处理 | 第19-20页 |
| 3 结果 | 第20-26页 |
| 3.1 两组人群基本资料 | 第20页 |
| 3.2 Taqman 低密度芯片结果：AA+人群与 AA-人群血清中筛选出的表达有差异的 mi RNAs | 第20-22页 |
| 3.3 AA+人群和 AA-人群差异表达的 mi RNAs 的 Real Time PCR 验证结果 | 第22-26页 |
| 4 讨论 | 第26-29页 |
| 5 结论 | 第29-30页 |
| 参考文献 | 第30-33页 |
| 第二部分 血清MIRNAS在一型糖尿病人群中的表达及临床意义的研究 | 第33-53页 |
| 引言 | 第33-34页 |
| 1 材料 | 第34-36页 |
| 1.1 一般临床资料选择 | 第34页 |
| 1.2 仪器、试剂和耗材 | 第34-36页 |
| 2 方法 | 第36-38页 |
| 2.1 血清样本的收集和处理 | 第36页 |
| 2.2 血清小RNA的抽提及小RNA质量检测 | 第36页 |
| 2.3 cDNA的合成 | 第36页 |
| 2.4 预扩增 | 第36页 |
| 2.5 Taq Man低密度芯片 | 第36页 |
| 2.6 miRNA quantitative Real-Time PCR反应 | 第36-37页 |
| 2.7 C 肽浓度由 C 肽浓度测量来自西雅图医院的报告结果 | 第37页 |
| 2.8 统计学方法分析及处理 | 第37-38页 |
| 3 结果 | 第38-43页 |
| 3.1 实时荧光定量PCR的内参miRNAs选择 | 第38页 |
| 3.2 T1D病人与AA+非T1D人群血清miRNAs表达水平比较 | 第38页 |
| 3.3 血清 miRNAs 的表达水平与 T1D 进展的相关性 | 第38页 |
| 3.4 新发 T1D 病人血清 miRNAs 与 β 细胞功能的关系 | 第38-43页 |
| 4 讨论 | 第43-47页 |
| 5 结论 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-53页 |
| 综述 新的一型糖尿病生物标记物：循环miRNAs | 第53-85页 |
| 参考文献 | 第71-85页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第85-86页 |
| 英文缩略词索引表 | 第86-87页 |
| 致谢 | 第87-88页 |
