| 摘要 | 第5-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-14页 |
| 1.1 乙烯在果实成熟软化中的作用 | 第10-11页 |
| 1.2 胞壁水解酶对果实成熟软化的影响 | 第11-12页 |
| 1.3 N-糖基化酶 β-hex在果实软化中的作用 | 第12-13页 |
| 1.4 研究的目的、意义 | 第13-14页 |
| 第二章 材料方法 | 第14-22页 |
| 2.1 实验材料和处理 | 第14页 |
| 2.2 果实硬度和乙烯测定 | 第14页 |
| 2.3 基因克隆和序列分析 | 第14-18页 |
| 2.3.1 果实总RNA提取 | 第14-15页 |
| 2.3.2 cDNA合成 | 第15页 |
| 2.3.3 目的基因特异片段克隆 | 第15-16页 |
| 2.3.4 目的基因特异全长克隆 | 第16-18页 |
| 2.3.5 生物信息学分析 | 第18页 |
| 2.4 实时荧光定量PCR（q-PCR）测定相关基因的表达活性 | 第18-20页 |
| 2.4.1 引物设计 | 第19页 |
| 2.4.2 cDNA制备 | 第19页 |
| 2.4.3 实时荧光定量 | 第19-20页 |
| 2.4.4 实时荧光定量的数据处理方法 | 第20页 |
| 2.5 细胞壁降解酶和膜脂氧化相关酶活性测定 | 第20-21页 |
| 2.5.1 β-hex酶活性测定 | 第20页 |
| 2.5.2 PME，exo-PG，endo-PG，和 β-Gal酶活性测定 | 第20-21页 |
| 2.6 数据统计和分析 | 第21-22页 |
| 第三章 实验结果 | 第22-32页 |
| 3.1 基因目的片段和全长克隆 | 第22页 |
| 3.2 Pphex1和Pphex2序列分析 | 第22-25页 |
| 3.3 果实发育阶段 β-hex酶活性和基因表达模式 | 第25-27页 |
| 3.4 采后果实硬度，乙烯的释放速率的变化 | 第27-28页 |
| 3.5 桃果实软化过程中 β-hex酶活性变化和基因表达 | 第28-29页 |
| 3.6 桃果实软化过程中PpACS和PpACO基因表达的变化 | 第29-30页 |
| 3.7 桃果实软化过程中细胞壁水解酶活性 | 第30-32页 |
| 第四章 讨论 | 第32-35页 |
| 4.1 Pphex1和Pphex2基因的进化及其编码蛋白质性质的分析 | 第32页 |
| 4.2 果实发育阶段 β-hex酶和基因的作用 | 第32-33页 |
| 4.3 果实成熟阶段 β-hex酶和基因的作用 | 第33-35页 |
| 第五章 结论 | 第35-36页 |
| 参考文献 | 第36-41页 |
| 缩略词 | 第41-42页 |
| 致谢 | 第42-43页 |
| 作者简介 | 第43页 |
