摘要 | 第7-9页 |
ABSTRACT | 第9-10页 |
英文缩略词 | 第11-12页 |
前言 | 第12-15页 |
参考文献 | 第13-15页 |
第一章 理论研究 | 第15-25页 |
第一节 “癌毒”理论及医治大法探讨 | 第15-18页 |
1 “癌毒”理论 | 第15-16页 |
2. 癌毒的医治方法 | 第16-17页 |
参考文献 | 第17-18页 |
第二节 白花蛇舌草在癌毒辨治中的地位 | 第18-21页 |
2.1 白花蛇舌草 | 第18页 |
2.2 白花蛇舌草药用价值 | 第18页 |
2.3 白花蛇舌草与癌毒辨治 | 第18-19页 |
2.4 白花蛇舌草与肿瘤医治 | 第19页 |
参考文献 | 第19-21页 |
第三节 中药抗肿瘤机制研究新进展 | 第21-25页 |
3.1 干预肿瘤增殖周期,诱导细胞凋亡和自噬 | 第21页 |
3.2 活化AMPK通路 | 第21-22页 |
3.3 抑制肿瘤血管生成 | 第22页 |
3.4 抑制细胞外基质的降解 | 第22-23页 |
3.5 抗多药耐药作用 | 第23页 |
3.6 Hedgehog信号通路 | 第23页 |
参考文献 | 第23-25页 |
第二章 实验研究 | 第25-76页 |
第一节 白花蛇舌草诱导结肠癌细胞凋亡及程序性坏死 | 第25-43页 |
1. 材料与方法 | 第25-34页 |
2. 结果 | 第34-40页 |
3. 讨论 | 第40-41页 |
4. 结论 | 第41-42页 |
5. 参考文献 | 第42-43页 |
第二节 白花蛇舌草提取物(OLDENLANDIA DIFFUSA EXTRACTS)活化AMPK的作用 | 第43-59页 |
1. 材料与方法 | 第43-49页 |
2. 结果 | 第49-56页 |
3. 讨论 | 第56-57页 |
4. 结论 | 第57页 |
5. 参考文献 | 第57-59页 |
第三节 白花蛇舌草提取物活化AMPK的下游通路及机制研究 | 第59-76页 |
1. 材料与方法 | 第59-67页 |
1.1 材料 | 第59页 |
1.2 细胞株及细胞培养 | 第59页 |
1.3 结肠癌组织原代肿瘤细胞培养 | 第59-60页 |
1.4 MTT法检测结肠癌细胞生长抑制率 | 第60页 |
1.5 ELISA检测细胞调亡 | 第60-61页 |
1.6 台盼蓝(trypan blue)染色检测细胞死亡 | 第61页 |
1.7 磷脂酰丝氨酸外翻分析流式细胞仪检测细胞凋亡 (AnnexinV法) | 第61-62页 |
1.8 LDH分析法检测细胞死亡率 | 第62-63页 |
1.9 线粒体免疫共沉淀(Mitochondrial immunoprecipitation) | 第63页 |
1.10 短发夹RNA(shRNA)及稳定细胞的选择 | 第63页 |
1.11 AMPK显性失活突变细胞制备 | 第63页 |
1.12 Western Blot(蛋白质印迹) | 第63-65页 |
1.13 免疫组化技术 | 第65-66页 |
1.14 在体裸鼠结肠癌种植模型 | 第66页 |
1.15 统计学处理 | 第66-67页 |
2 结果 | 第67-73页 |
2.1 免疫共沉淀验证白花蛇舌草提取物激活HCT-116细胞AMPK-p53通路 | 第67页 |
2.2 白花蛇舌草提取物激活HCT-116结肠癌细胞中AMPK-p53信号通路 | 第67-68页 |
2.3 p53 RNAi和DN-p53阻断白花蛇舌草提取物诱导的结肠癌细胞凋亡 | 第68-69页 |
2.4 白花蛇舌草提取物激活原代结肠癌细胞中AMPK-p53信号通路 | 第69-70页 |
2.5 白花蛇舌草提取物对裸鼠HCT-116结肠癌移植瘤有明显抑制作用 | 第70-71页 |
2.6 白花蛇舌草提取物作用的裸鼠移植瘤内AMPK-p53通路蛋白表达 | 第71-72页 |
2.7 激活AMPK诱导促癌基因(EGFR、PDGFRα/β和FSCN1)溶酶体转位和降解 | 第72-73页 |
3 讨论 | 第73-74页 |
4 结论 | 第74页 |
5 参考文献 | 第74-76页 |
结论 | 第76-78页 |
本研究的创新点 | 第78页 |
本研究的不足 | 第78页 |
参考文献 | 第78-79页 |
攻读博士学位期间取得的研究成果 | 第79-80页 |
致谢 | 第80-81页 |
作者简介 | 第81-82页 |