| 致谢 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| abstract | 第8-9页 |
| 英文缩略词 | 第10-13页 |
| 1 绪论 | 第13-18页 |
| 2 材料和仪器 | 第18-25页 |
| 2.1 主要仪器与耗材 | 第18页 |
| 2.2 试剂 | 第18-20页 |
| 2.3 细胞 | 第20页 |
| 2.4 实验方法 | 第20-25页 |
| 2.4.1 内皮细胞培养 | 第20-21页 |
| 2.4.2 内皮细胞增殖实验 | 第21页 |
| 2.4.3 内皮细胞凋亡实验 | 第21页 |
| 2.4.4 内皮细胞损伤修复实验 | 第21页 |
| 2.4.5 内皮细胞Transwell迁移实验 | 第21页 |
| 2.4.6 内皮细胞成管实验 | 第21-22页 |
| 2.4.7 内皮细胞F-Actin染色 | 第22页 |
| 2.4.8 小鼠耳朵血管生成和淋巴管生成实验 | 第22页 |
| 2.4.9 小鼠体内胶栓实验 | 第22页 |
| 2.4.10 内皮细胞裂解与western blot检测 | 第22-23页 |
| 2.4.11 内皮细胞VEGFR-2,FGFR-1,VEGFR-3内在化的流式检测 | 第23页 |
| 2.4.12 内皮细胞VEGFR-2,FGFR-1,VEGFR3/EEA1共定位的检测 | 第23页 |
| 2.4.13 线粒体DNA拷贝数的检测 | 第23-24页 |
| 2.4.14 线粒体mROS含量的测定 | 第24页 |
| 2.4.15 数据的统计 | 第24-25页 |
| 3 实验结果 | 第25-51页 |
| 3.1 NRTIs通过损伤内皮细胞的增殖迁移能力来抑制血管生成和淋巴管生成 | 第25-33页 |
| 3.2 TDF抑制体内血管生成和淋巴管生成 | 第33-37页 |
| 3.3 NRTIs抑制内皮细胞RTK信号通路 | 第37-41页 |
| 3.4 NRTIs抑制内皮细胞RTKs内在化或抑制其进入早期内吞小泡 | 第41-51页 |
| 4 讨论 | 第51-53页 |
| 参考文献 | 第53-57页 |
| 附件 | 第57页 |
