| 中英文缩略表 | 第4-7页 |
| 中文摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 1 前言 | 第11-25页 |
| 1.1 植物SnRK1研究进展 | 第11-21页 |
| 1.1.1 植物SnRK1的发现 | 第11-12页 |
| 1.1.2 植物SnRK1蛋白激酶复合体的结构 | 第12-14页 |
| 1.1.3 植物SnRK1蛋白激酶复合体的功能 | 第14-17页 |
| 1.1.4 植物SnRK1蛋白激酶活性调节 | 第17-21页 |
| 1.2 水杨酸相关研究进展 | 第21-24页 |
| 1.2.1 植物体内水杨酸的新陈代谢 | 第21-22页 |
| 1.2.2 水杨酸与植物逆境胁迫 | 第22页 |
| 1.2.3 水杨酸与植物的光合作用 | 第22-23页 |
| 1.2.4 水杨酸盐与AMPK | 第23-24页 |
| 1.3 本研究的目的和意义 | 第24-25页 |
| 2 材料与方法 | 第25-31页 |
| 2.1 实验材料与处理 | 第25-27页 |
| 2.1.1 超表达番茄材料与处理 | 第25页 |
| 2.1.2 草莓材料与处理 | 第25-26页 |
| 2.1.3 PCR引物及多肽的合成 | 第26-27页 |
| 2.2 测定方法 | 第27-29页 |
| 2.2.1 草莓中SnRK1成员鉴定 | 第27页 |
| 2.2.2 植物材料总RNA的TRIzol试剂法提取 | 第27页 |
| 2.2.3 模板cDNA的合成 | 第27页 |
| 2.2.4 实时荧光定量PCR | 第27-28页 |
| 2.2.5 SnRK1酶活性测定 | 第28页 |
| 2.2.6 净光合速率的测定 | 第28页 |
| 2.2.7 叶片SPAD值测定 | 第28页 |
| 2.2.8 可溶性糖及淀粉含量测定 | 第28页 |
| 2.2.9 抗氧化酶活性及丙二醛含量测定 | 第28-29页 |
| 2.2.10 根系活力测定 | 第29页 |
| 2.2.11 植株养分含量测定 | 第29页 |
| 2.3 本研究使用的软件 | 第29-30页 |
| 2.4 数据处理 | 第30-31页 |
| 3 结果与分析 | 第31-47页 |
| 3.1 草莓SnRK1蛋白激酶基因家族各成员的氨基酸序列比较及进化树分析 | 第31-34页 |
| 3.2 草莓不同组织中SnRK1蛋白激酶活性及FaSnRK1s表达特性分析 | 第34-35页 |
| 3.3 SA对草莓碳代谢及植株生长的影响 | 第35-41页 |
| 3.3.1 草莓叶片和根系中FaSnRK1s对SA处理的响应 | 第35-36页 |
| 3.3.2 SA对草莓叶片及根系中SnRK1激酶活性的影响 | 第36-38页 |
| 3.3.3 SA对草莓叶片净光合速率的影响 | 第38-39页 |
| 3.3.4 SA对可溶性糖和淀粉含量的影响 | 第39-41页 |
| 3.3.5 SA对草莓苗期生长的影响 | 第41页 |
| 3.4 超表达桃PpSnRK1α 对营养胁迫下番茄植株衰老的影响 | 第41-47页 |
| 3.4.1 超表达PpSnRK1α 番茄与野生型番茄的叶片表型 | 第41-42页 |
| 3.4.2 超表达PpSnRK1α 番茄叶片及根系中SnRK1激酶活性变化 | 第42页 |
| 3.4.3 超表达PpSnRK1α 对番茄叶片净光合速率和叶绿素含量的影响 | 第42-43页 |
| 3.4.4 超表达PpSnRK1α 对番茄叶片抗氧化酶活性及丙二醛含量的影响 | 第43-44页 |
| 3.4.5 超表达PpSnRK1α 对番茄根系活力及养分的吸收、分配的影响 | 第44-47页 |
| 4 讨论 | 第47-52页 |
| 4.1 草莓SnRK1蛋白激酶各亚基编码基因的表达特性 | 第47页 |
| 4.2 水杨酸对SnRK1酶活性及草莓碳代谢与植株生长的影响 | 第47-49页 |
| 4.3 超表达桃PpSnRK1α 对营养胁迫下番茄植株生长的影响 | 第49-52页 |
| 5 结论 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-69页 |
| 附录 | 第69-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
| 攻读学位期间发表论文情况 | 第73页 |
