| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 英文缩略图 | 第11-13页 |
| 第一章 综述 | 第13-25页 |
| 1 多糖及硫酸酯化多糖 | 第13-15页 |
| ·松花粉 | 第13页 |
| ·多糖 | 第13-14页 |
| ·硫酸酯化多糖 | 第14-15页 |
| 2 小鼠巨噬细胞 | 第15-20页 |
| ·巨噬细胞的功能分类 | 第15-17页 |
| ·多糖活化小鼠巨噬细胞 | 第17-18页 |
| ·多糖激活小鼠巨噬细胞的信号通路 | 第18-20页 |
| 3 小鼠巨噬细胞内的游离钙离子 | 第20-23页 |
| ·重要的第二信使-钙离子 | 第20-21页 |
| ·细胞内钙离子通路的研究 | 第21-23页 |
| 4 课题的目的意义 | 第23-25页 |
| 第二章 破壁马尾松花粉多糖的提取、分离提纯及其硫酸酯化 | 第25-37页 |
| 1 材料与试剂 | 第25页 |
| 2 仪器与设备 | 第25-26页 |
| 3 实验步骤 | 第26-30页 |
| ·破壁马尾松花粉多糖的提取 | 第26-27页 |
| ·破壁马尾松花粉中多糖含量的测定 | 第27-28页 |
| ·破壁马尾松花粉多糖的分离纯化 | 第28-29页 |
| ·分离纯化多糖的硫酸酯化 | 第29-30页 |
| 4 实验结果 | 第30-35页 |
| ·马尾松花粉多糖得率 | 第30-31页 |
| ·多糖含量的测定 | 第31页 |
| ·粗多糖的分离纯化 | 第31-32页 |
| ·PPM60-D 的硫酸酯化及鉴定 | 第32-35页 |
| 5 讨论 | 第35-37页 |
| 第三章 PPM60-D及SPPM60-D对小鼠腹腔巨噬细胞相对活性及小鼠巨噬细胞RAW264.7增殖能力的影响 | 第37-43页 |
| 1 材料与试剂 | 第37-38页 |
| ·实验动物及细胞系 | 第37页 |
| ·实验材料 | 第37页 |
| ·试剂配制 | 第37-38页 |
| 2 仪器与设备 | 第38-39页 |
| 3 方法步骤 | 第39-40页 |
| ·小鼠腹腔巨噬细胞的分离制备 | 第39页 |
| ·台盼蓝（Trypan blue）排斥法检验小鼠腹腔巨噬细胞的成活率 | 第39-40页 |
| ·MTT 法测定 PPM60-D 及 SPPM60-D 对小鼠腹腔巨噬细胞的相对活性的影响 | 第40页 |
| ·MTT 法测定 PPM60-D 及 SPPM60-D 对小鼠巨噬细胞 RAW264.7 增殖能力的影响 | 第40页 |
| ·统计学处理 | 第40页 |
| 4 实验结果 | 第40-42页 |
| ·台盼蓝排斥实验 | 第40页 |
| ·PPM60-D 及 SPPM60-D 对小鼠腹腔巨噬细胞相对活性的影响 | 第40-41页 |
| ·PPM60-D 及 SPPM60-D 对小鼠巨噬细胞系 RAW264.7 增殖能力的影响 | 第41-42页 |
| 5 讨论 | 第42-43页 |
| 第四章 PPM60-D 及 SPPM60-D 对小鼠巨噬细胞 RAW264.7 [Ca~(2+)]i调控机制的初步探究 | 第43-56页 |
| 1 材料与试剂 | 第43-44页 |
| ·细胞 | 第43页 |
| ·药物与试剂 | 第43-44页 |
| ·试剂配制 | 第44页 |
| 2 仪器与设备 | 第44-45页 |
| 3 方法与步骤 | 第45-47页 |
| ·Fura-2/AM 探针负载细胞 | 第45页 |
| ·各抑制剂处理巨噬细胞 RAW264.7 | 第45-46页 |
| ·双波长荧光分光光度法测定巨噬细胞 RAW264.7[Ca~(2+)]i | 第46-47页 |
| ·统计学处理结果 | 第47页 |
| 4 实验结果 | 第47-52页 |
| ·PPM60-D 及 SPPM60-D 对巨噬细胞 RAW264.7 [Ca~(2+)]i的影响 | 第47页 |
| ·RAW264.7 细胞钙离子通路中的几种特异性抑制剂对细胞[Ca~(2+)]i的影响 | 第47-52页 |
| 5 讨论 | 第52-56页 |
| 第五章 PPM60-D 及 SPPM60-D 对小鼠巨噬细胞的免疫调节能力 | 第56-74页 |
| 1 材料与试剂 | 第56-57页 |
| 2 仪器与设备 | 第57页 |
| 3 方法步骤 | 第57-62页 |
| ·细胞黏附实验 | 第57-58页 |
| ·细胞划痕愈合实验 | 第58页 |
| ·细胞迁移实验 | 第58页 |
| ·中性红溶液的配制及吞噬实验 | 第58-59页 |
| ·细胞培养上清液的准备 | 第59页 |
| ·细胞因子检测前准备 | 第59页 |
| ·细胞因子检测 | 第59-60页 |
| ·细胞上清液中 NO 的检测 | 第60-61页 |
| ·巨噬细胞合成 NO 合酶（NOS）的检测 | 第61-62页 |
| 4 实验结果 | 第62-72页 |
| ·PPM60-D 及 SPPM60-D 对小鼠巨噬细胞 RAW264.7 贴壁能力的影响 | 第62-63页 |
| ·PPM60-D 及 SPPM60-D 对小鼠巨噬细胞 RAW264.7 划痕愈合能力的影响 | 第63-64页 |
| ·PPM60-D 及 SPPM60-D 对小鼠巨噬细胞迁移能力的影响 | 第64-65页 |
| ·PPM60-D 及 SPPM60-D 对小鼠巨噬细胞吞噬能力的影响 | 第65-66页 |
| ·PPM60-D 及 SPPM60-D 对巨噬细胞分泌细胞因子（IL-1、IL-6、TNF-α）及 NO、NO 合酶的影响 | 第66-72页 |
| 5 讨论 | 第72-74页 |
| 第六章 PPM60-D 及 SPPM60-D 对免疫抑制的小鼠巨噬细胞 RAW264.7 的免疫恢复能力 | 第74-80页 |
| 1 材料与试剂 | 第74页 |
| 2 仪器与设备 | 第74-75页 |
| 3 方法步骤 | 第75页 |
| ·PPM60-D 及 SPPM60-D 对免疫抑制的巨噬细胞吞噬能力的影响 | 第75页 |
| ·细胞因子以及 NO、NO 合酶的测定 | 第75页 |
| 4 实验结果 | 第75-78页 |
| ·PPM60-D 及 SPPM60-D 对免疫抑制巨噬细胞 RAW264.7 吞噬能力的恢复 | 第75-76页 |
| ·PPM60-D 及 SPPM60-D 对免疫抑制巨噬细胞 RAW264.7 分泌细胞因子（IL-1、IL-6、TNF-α）及 NO 的影响 | 第76-78页 |
| 5 讨论 | 第78-80页 |
| 结论 | 第80-81页 |
| 不足与展望 | 第81-83页 |
| 参考文献 | 第83-88页 |
| 致谢 | 第88-90页 |
| 发表文章 | 第90页 |
