摘要 | 第1-6页 |
Abstract | 第6-12页 |
第一章 综述 | 第12-22页 |
1 辛基酚聚氧乙烯醚(OPNEO)概述 | 第12-14页 |
2 OPNEO及其降解产物的检测和环境中的分布 | 第14页 |
3 OPNEO及其降解产物的毒性 | 第14-15页 |
·OPnEO及典型降解产物的生物毒性 | 第14-15页 |
·OPnEO及典型降解产物的雌激素作用 | 第15页 |
4 OPNEO的生物降解研究 | 第15-17页 |
5 典型环境污染物修复基因工程菌的构建及其应用研究 | 第17-18页 |
6 研究内容、目的和意义 | 第18-22页 |
·研究内容 | 第18-21页 |
·研究目的 | 第21页 |
·研究意义 | 第21-22页 |
第二章 辛基酚聚氧乙烯醚高效降解菌H1的筛选及其鉴定 | 第22-34页 |
1 仪器与材料 | 第22-23页 |
·实验仪器 | 第22页 |
·试验试剂 | 第22-23页 |
·培养基 | 第23页 |
·16S rDNA特异引物 | 第23页 |
·样品来源 | 第23页 |
2 实验方法 | 第23-27页 |
·降解菌的富集、分离和纯化 | 第23-24页 |
·OPnEO浓度的测定 | 第24页 |
·形态特征鉴定 | 第24-25页 |
·降解菌生理生化测定 | 第25-26页 |
·降解菌的分子鉴定 | 第26-27页 |
3 结果与分析 | 第27-33页 |
·OPnEO(n=9-10)的标准曲线 | 第27页 |
·降解菌的筛选 | 第27-28页 |
·降解菌的鉴定 | 第28-33页 |
4 本章小结 | 第33-34页 |
第三章 辛基酚聚氧乙烯醚降解途径研究 | 第34-47页 |
1 仪器与材料 | 第34-35页 |
·实验仪器 | 第34页 |
·试验试剂 | 第34页 |
·培养基 | 第34-35页 |
·菌种来源 | 第35页 |
2 实验方法 | 第35-37页 |
·降解菌生长曲线测定 | 第35页 |
·降解实验 | 第35-36页 |
·OPnEO降解产物分析 | 第36-37页 |
·乙醛和乙醛酸的测定方法 | 第37页 |
3 实验结果 | 第37-45页 |
·H1的生长曲线 | 第37-38页 |
·降解产物的测定与分析 | 第38-45页 |
·乙醛和乙醛酸的测定 | 第45页 |
4 结论 | 第45-47页 |
第四章 不动杆菌H1降解底物广谱性研究 | 第47-60页 |
1 仪器和材料 | 第47页 |
·实验仪器 | 第47页 |
·实验试剂 | 第47页 |
·培养基 | 第47页 |
·菌种来源 | 第47页 |
2 实验方法 | 第47-49页 |
·不动杆菌H1降解底物广谱性实验 | 第47-48页 |
·分析方法 | 第48页 |
·菌株H1的驯化 | 第48页 |
·菌株H1的菌悬液的制备 | 第48页 |
·SDS初始浓度对菌株H1生长和降解SDS的影响 | 第48-49页 |
·菌株H1的生长和降解特性 | 第49页 |
·降解产物分析 | 第49页 |
3 实验结果 | 第49-59页 |
·菌株H1降解底物广谱性分析 | 第49页 |
·SDS的标准曲线 | 第49-50页 |
·降解菌H1驯化前后生长及降解情况比较 | 第50-51页 |
·菌株H1降解特性 | 第51-59页 |
4 结论 | 第59-60页 |
第五章 辛基酚聚氧乙烯醚降解菌H1的降解成因研究 | 第60-69页 |
1 仪器与材料 | 第60-61页 |
·实验仪器 | 第60页 |
·试验试剂 | 第60页 |
·培养基 | 第60-61页 |
·菌种来源 | 第61页 |
2 实验方法 | 第61-62页 |
·质粒提取 | 第61页 |
·质粒消除 | 第61页 |
·质粒消除后的特性检测 | 第61-62页 |
·基因adh1检测 | 第62页 |
·质粒DNA回收和转化 | 第62页 |
3 结果与分析 | 第62-68页 |
·H1质粒提取 | 第62-63页 |
·质粒消除结果 | 第63-64页 |
·质粒消除后的衍生株与原始株比较结果 | 第64-67页 |
·基因adh1检测 | 第67-68页 |
·质粒转化结果 | 第68页 |
4 本章小结 | 第68-69页 |
第六章 主要结论和创新点 | 第69-71页 |
1 主要结论 | 第69-70页 |
2 创新点 | 第70-71页 |
参考文献 | 第71-77页 |
致谢 | 第77-78页 |
作者简介 | 第78页 |