| 中文摘要 | 第1-10页 |
| ABSTRACT | 第10-13页 |
| 第一章 综述 | 第13-22页 |
| ·硫化氢(H_2S)生理调节功能的研究 | 第13-19页 |
| ·气体信号分子H_2S的物理化学性质 | 第13页 |
| ·生物体内H_2S的产生过程 | 第13-17页 |
| ·H_2S的生理功能 | 第17-19页 |
| ·微生物对镉(Cd~(2+))胁迫的应答机理 | 第19-20页 |
| ·Cd~(2+)对微生物的毒害作用 | 第19页 |
| ·微生物对Cd~(2+)等重金属胁迫耐性的研究现状 | 第19-20页 |
| ·本实验的研究目的和意义 | 第20-22页 |
| 第二章 重组蛋白AtLCD和AtDCD的表达及其功能研究 | 第22-40页 |
| ·材料和方法 | 第22页 |
| ·植物、菌株和载体 | 第22页 |
| ·实验试剂和仪器 | 第22页 |
| ·实验方法 | 第22-30页 |
| ·原核表达载体的过程 | 第23-28页 |
| ·SDS-PAGE电泳检测 | 第28页 |
| ·蛋白AtLCD和AtDCD的纯化 | 第28-29页 |
| ·蛋白AtLCD和AtDCD的酶活检测 | 第29-30页 |
| ·结果与分析 | 第30-39页 |
| ·PCR扩增目的基因AtLCD和AtDCD | 第30页 |
| ·载体pMD18-T-AtLCD和pMD18-T-A4tDCD的构建及酶切检测 | 第30-31页 |
| ·载体pET28a-AtLCD和pET28a-A4tDCD的构建及酶切检测 | 第31页 |
| ·AtLCD和AtDCD的SDS-PAGE电泳检测 | 第31-32页 |
| ·AtLCD和AtDCD的纯化 | 第32页 |
| ·AtLCD和AtDCD蛋白结构的生物信息学初步预测 | 第32-37页 |
| ·蛋白AtLCD和AtDCD的酶活检测 | 第37-39页 |
| ·讨论 | 第39-40页 |
| 第三章 菌株BL21(LCD)和BL21(DCD)对Cd~(2+)胁迫耐性的测定 | 第40-49页 |
| ·材料和试剂 | 第40页 |
| ·实验材料 | 第40页 |
| ·实验试剂和仪器 | 第40页 |
| ·实验方法 | 第40-42页 |
| ·大肠杆菌的培养、处理及表型观察 | 第40-41页 |
| ·Cd~(2+)胁迫下大肠杆菌中H_2O_2和MDA含量的测定 | 第41-42页 |
| ·Cd~(2+)胁迫下大肠杆菌中SOD和CAT活性的测定 | 第42页 |
| ·结果与分析 | 第42-47页 |
| ·AtLCD和AtDCD对Cd~(2+)胁迫下大肠杆菌生长的影响 | 第42-44页 |
| ·AtLCD和AtDCD、NaHiS对Cd~(2+)胁迫下BL21(LCD)和BL21(DCD)菌株H202和MDA含量的影响 | 第44-46页 |
| ·AtLCD和AtDCD、NaHiS对Cd~(2+)胁迫下BL21(LCD)和BL21(DCD)菌株CAT和SOD酶活的影响 | 第46-47页 |
| ·NaHS对野生型大肠杆菌的生长影响 | 第47页 |
| ·讨论 | 第47-49页 |
| 结论 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-55页 |
| 附录 | 第55-58页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第58-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
| 个人简况及联系方式 | 第60-62页 |
