| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 第一章 前言 | 第10-23页 |
| 1 我国黄颡鱼的养殖现状 | 第10-11页 |
| ·黄颡鱼的分类与分布 | 第10页 |
| ·黄颡鱼的养殖现状 | 第10页 |
| ·黄颡鱼养殖中存在的问题及解决办法 | 第10-11页 |
| ·个体性成熟早 | 第10页 |
| ·雌雄生长差异显著 | 第10-11页 |
| ·雄性率不能达到100% | 第11页 |
| 2 鱼类的性别决定与人工控制 | 第11-18页 |
| ·影响性别决定的环境因素 | 第11-13页 |
| ·温度对性别决定的影响 | 第11-12页 |
| ·外源激素对性别决定的影响 | 第12-13页 |
| ·其它因素的影响 | 第13页 |
| ·影响性别决定的遗传因素 | 第13-14页 |
| ·鱼类性别的人工控制 | 第14-18页 |
| ·鱼类性别人工控制的意义 | 第14-15页 |
| ·鱼类性别人工控制的方法及途径 | 第15-18页 |
| 3 选题背景 | 第18-23页 |
| ·性别相关基因概述 | 第18-22页 |
| ·鱼类DMRT1基因的研究进展 | 第22-23页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第23页 |
| 第二章 黄颡鱼DMRT1基因全长克隆 | 第23-35页 |
| 1 材料与方法 | 第23-28页 |
| ·实验材料 | 第23-24页 |
| ·实验样本 | 第23页 |
| ·主要仪器设备 | 第23-24页 |
| ·主要试剂 | 第24页 |
| ·引物设计 | 第24页 |
| ·实验方法 | 第24-28页 |
| ·精巢总RNA抽提 | 第24-25页 |
| ·DM-domain区扩增 | 第25-26页 |
| ·5’端及3’端RACE SMART快速扩增 | 第26-27页 |
| ·基因组内含子扩增 | 第27页 |
| ·PCR产物分离与纯化 | 第27页 |
| ·感受态细胞制备 | 第27页 |
| ·纯化产物克隆转化与测序 | 第27-28页 |
| ·测序结果分析 | 第28页 |
| 2 结果与分析 | 第28-33页 |
| ·黄颡鱼DMRT1基因全长分离 | 第28-30页 |
| ·黄颡鱼DMRT1基因序列分析 | 第30-33页 |
| 3 讨论 | 第33-35页 |
| ·黄颡鱼DMRT1 cDNA结构特征 | 第33页 |
| ·黄颡鱼DMRT1基因保守性 | 第33-35页 |
| 第三章 黄颡鱼DMRT1基因的表达研究 | 第35-45页 |
| 1 材料与方法 | 第35-37页 |
| ·实验材料 | 第35-36页 |
| ·实验样本 | 第35页 |
| ·主要仪器设备 | 第35页 |
| ·主要试剂 | 第35页 |
| ·引物设计 | 第35-36页 |
| ·实验方法 | 第36-37页 |
| ·黄颡鱼DMRT1半定量RT-PCR | 第36页 |
| ·黄颡鱼DMRT1 Real-time RT-PCR | 第36-37页 |
| 2 结果与分析 | 第37-43页 |
| ·黄颡鱼DMRT1半定量RT-PCR结果 | 第37-39页 |
| ·黄颡鱼DMRT1 Real-time RT-PCR结果 | 第39-43页 |
| 3 讨论 | 第43-45页 |
| 第四章 黄颡鱼DMRT1基因与生长性状的相关性研究 | 第45-54页 |
| 1 材料与方法 | 第45-48页 |
| ·实验材料 | 第45页 |
| ·实验样本 | 第45页 |
| ·主要仪器设备 | 第45页 |
| ·主要试剂 | 第45页 |
| ·引物设计 | 第45页 |
| ·实验方法 | 第45-48页 |
| ·基因组DNA抽提 | 第45-46页 |
| ·DNA纯度检测 | 第46页 |
| ·PCR扩增及SSCP基因分型 | 第46-47页 |
| ·DNA序列测定 | 第47页 |
| ·数据统计分析 | 第47-48页 |
| 2 结果与分析 | 第48-52页 |
| ·PCR扩增及多态性检测 | 第48-50页 |
| ·群体遗传多样性分析 | 第50-51页 |
| ·DMRT1多态性与生长性状相关性分析 | 第51-52页 |
| 3 讨论 | 第52-54页 |
| ·DMRT1-SS1引物作为黄颡鱼生长性状分子标记的可能性 | 第52页 |
| ·DMRT1基因对黄颡鱼生长性状的影响分析 | 第52-54页 |
| 全文结论 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
| 附录 | 第64-65页 |
| 硕士期间发表的主要论文 | 第65页 |
