| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-12页 |
| 第1章 绪论 | 第12-21页 |
| ·糖尿病与降糖药物的概述 | 第12-13页 |
| ·马齿苋概述 | 第13-16页 |
| ·马齿苋的形态特征及分布 | 第13-14页 |
| ·马齿苋化学组成 | 第14-16页 |
| ·马齿苋多糖的研究进展 | 第16-19页 |
| ·马齿苋多糖的生物活性 | 第16-18页 |
| ·马齿苋多糖结构的研究 | 第18-19页 |
| ·本课题的选题背景、研究意义及研究内容 | 第19-21页 |
| ·选题背景与研究意义 | 第19-20页 |
| ·本文的主要研究内容 | 第20-21页 |
| 第2章 马齿苋多糖的提取及纯化 | 第21-42页 |
| ·引言 | 第21页 |
| ·试验材料、试剂及仪器 | 第21-22页 |
| ·试验原料 | 第21页 |
| ·试验试剂 | 第21页 |
| ·试验仪器 | 第21-22页 |
| ·试验方法 | 第22-26页 |
| ·马齿苋水溶性总多糖含量测定方法的建立 | 第22-23页 |
| ·马齿苋多糖提取工艺的优化 | 第23-25页 |
| ·马齿苋多糖脱色工艺的优化 | 第25-26页 |
| ·结果与讨论 | 第26-41页 |
| ·测定马齿苋水溶性总多糖含量的方法 | 第26-28页 |
| ·马齿苋多糖提取工艺的最佳条件 | 第28-37页 |
| ·马齿苋多糖脱色工艺的最佳条件 | 第37-41页 |
| ·本章小结 | 第41-42页 |
| 第3章 马齿苋多糖的分级及理化性质的测定 | 第42-52页 |
| ·引言 | 第42页 |
| ·试验材料、试剂及试验仪器 | 第42-43页 |
| ·试验材料 | 第42页 |
| ·试验试剂 | 第42-43页 |
| ·试验仪器 | 第43页 |
| ·试验方法 | 第43-45页 |
| ·精制马齿苋多糖的工艺流程 | 第43页 |
| ·多糖的分级 | 第43-44页 |
| ·多糖的凝胶柱层析 | 第44页 |
| ·马齿苋多糖的纯度鉴定 | 第44页 |
| ·多糖分子量的测定 | 第44-45页 |
| ·基本理化性质的测定 | 第45页 |
| ·马齿苋多糖的组成分析 | 第45页 |
| ·结果与讨论 | 第45-51页 |
| ·马齿苋多糖的纤维素柱层析结果 | 第45-47页 |
| ·马齿苋多糖凝胶柱层析结果 | 第47页 |
| ·马齿苋多糖的纯度 | 第47-49页 |
| ·多糖POPⅠ、POPⅡ和POPⅢ分子量 | 第49页 |
| ·基本理化性质 | 第49-50页 |
| ·马齿苋多糖的组成分析 | 第50-51页 |
| ·本章小结 | 第51-52页 |
| 第4章 马齿苋多糖的一级结构表征 | 第52-62页 |
| ·引言 | 第52页 |
| ·试验材料、试剂及仪器 | 第52-53页 |
| ·试验材料 | 第52页 |
| ·试验试剂 | 第52-53页 |
| ·试验仪器 | 第53页 |
| ·试验方法 | 第53-55页 |
| ·多糖的水解 | 第53页 |
| ·衍生物的制备(糖腈乙酸酯衍生化) | 第53-54页 |
| ·红外光谱分析 | 第54页 |
| ·高碘酸氧化反应 | 第54页 |
| ·Smith降解反应 | 第54-55页 |
| ·结果与讨论 | 第55-61页 |
| ·红外色谱分析结果 | 第55-56页 |
| ·POPⅠ、POPⅡ和POPⅢ的单糖组成 | 第56-58页 |
| ·高碘酸氧化结果分析 | 第58-59页 |
| ·Smith降解结果分析 | 第59-61页 |
| ·本章小结 | 第61-62页 |
| 第5章 马齿苋多糖的体外抗氧化活性研究 | 第62-68页 |
| ·引言 | 第62页 |
| ·试验材料、试剂与仪器 | 第62-63页 |
| ·试验材料 | 第62-63页 |
| ·试验试剂 | 第63页 |
| ·试验仪器 | 第63页 |
| ·试验方法 | 第63-64页 |
| ·对·OH的清除作用(H_2O_2/Fe~(2+)体系法) | 第63页 |
| ·对DPPH自由基的清除作用 | 第63-64页 |
| ·多糖对Fe~(2+)诱发的脂质过氧化的抑制作用 | 第64页 |
| ·还原能力的测定 | 第64页 |
| ·结果及分析 | 第64-67页 |
| ·马齿苋多糖对·OH自由基的清除作用分析 | 第64-65页 |
| ·马齿苋多糖对DPPH自由基的清除作用分析 | 第65页 |
| ·马齿苋多糖对对Fe~(2+)诱导的脂质过氧化的抑制作用分析 | 第65-66页 |
| ·马齿苋多糖的还原能力 | 第66-67页 |
| ·本章小结 | 第67-68页 |
| 第6章 马齿苋多糖抗氧化活性的稳定性研究 | 第68-74页 |
| ·引言 | 第68页 |
| ·试验材料、试剂与仪器 | 第68-69页 |
| ·试验材料 | 第68页 |
| ·试验试剂 | 第68页 |
| ·试验仪器 | 第68-69页 |
| ·试验方法 | 第69页 |
| ·贮存时间和贮存温度对马齿苋多糖体外清除·OH的影响 | 第69页 |
| ·统计学处理 | 第69页 |
| ·结果与讨论 | 第69-73页 |
| ·保存时间对马齿苋多糖体外抗氧化作用的影响 | 第69-71页 |
| ·保存温度对马齿苋多糖体外抗氧化的影响 | 第71-73页 |
| ·本章小结 | 第73-74页 |
| 第7章 马齿苋多糖抗糖尿病作用机理的研究 | 第74-89页 |
| ·引言 | 第74页 |
| ·材料、试剂及仪器 | 第74-75页 |
| ·试验材料 | 第74-75页 |
| ·试验试剂 | 第75页 |
| ·试验仪器 | 第75页 |
| ·细胞培养试剂的配制 | 第75-76页 |
| ·培养液 | 第75页 |
| ·胎牛血清 | 第75-76页 |
| ·青链霉素 | 第76页 |
| ·PBS缓冲液 | 第76页 |
| ·MTT溶液 | 第76页 |
| ·胰蛋白酶消化液 | 第76页 |
| ·试验方法 | 第76-79页 |
| ·HIT-T15细胞的培养 | 第76页 |
| ·alloxan毒性试验 | 第76-77页 |
| ·马齿苋多糖对HI-T15细胞的影响 | 第77页 |
| ·马齿苋多糖对alloxan诱导氧化损伤的HIT-T15细胞的影响 | 第77-79页 |
| ·结果与讨论 | 第79-88页 |
| ·alloxan对HIT-T15细胞的影响 | 第79页 |
| ·马齿苋多糖对HIG-T15细胞的影响 | 第79-81页 |
| ·马齿苋多糖对alloxan诱导氧化损伤的HIT-T15细胞的影响 | 第81-88页 |
| ·本章小结 | 第88-89页 |
| 第8章 结论与展望 | 第89-91页 |
| ·结论 | 第89-90页 |
| ·展望 | 第90-91页 |
| 参考文献 | 第91-97页 |
| 攻读研究生学位研究成果 | 第97-98页 |
| 致谢 | 第98页 |
