| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-14页 |
| 第一章 前言 | 第14-31页 |
| 1 糖类药代动力学研究方法 | 第14-16页 |
| ·色谱法 | 第14-15页 |
| ·免疫学方法 | 第15页 |
| ·同位素示踪法 | 第15-16页 |
| ·生物检定法 | 第16页 |
| 2 寡糖微量分析方法 | 第16-19页 |
| ·气相色谱法 | 第17页 |
| ·高效液相色谱法 | 第17-18页 |
| ·紫外检测 | 第17-18页 |
| ·荧光检测 | 第18页 |
| ·高效阴离子交换-脉冲安培法检测 | 第18页 |
| ·高效毛细管电泳法 | 第18-19页 |
| ·质谱法 | 第19页 |
| 3 寡糖荧光标记方法 | 第19-29页 |
| ·中性糖的荧光标记 | 第20-23页 |
| ·氨基吡啶类 | 第20页 |
| ·苯胺类 | 第20-21页 |
| ·磺酸基类 | 第21-22页 |
| ·酰肼类 | 第22-23页 |
| ·氨基糖的荧光标记 | 第23-26页 |
| ·酸性糖的荧光标记 | 第26-29页 |
| ·含唾液酸的酸性糖 | 第26-27页 |
| ·含糖醛酸和硫酸基的酸性糖 | 第27-29页 |
| ·其他糖类的衍生 | 第29页 |
| 4 本论文的立题依据、意义及内容 | 第29-31页 |
| 第二章 α-萘胺柱前荧光衍生高效液相色谱分析 | 第31-43页 |
| 1 材料及仪器 | 第31-32页 |
| ·实验材料 | 第31-32页 |
| ·主要仪器 | 第32页 |
| 2 实验方法 | 第32-35页 |
| ·样品的衍生 | 第32-33页 |
| ·测定波长的选择 | 第32-33页 |
| ·反应体系的优化 | 第33页 |
| ·标记试剂用量的优化 | 第33页 |
| ·萃取试剂的优化 | 第33页 |
| ·体外样品的检测 | 第33-34页 |
| ·药物原型的检测 | 第33页 |
| ·降解药物的检测 | 第33-34页 |
| ·血清中样品的衍生 | 第34-35页 |
| ·血清样品的处理 | 第34页 |
| ·血清样品衍生剩余标记试剂的去除 | 第34页 |
| ·内标条件的优化 | 第34-35页 |
| 3 结果与讨论 | 第35-42页 |
| ·样品的衍生 | 第35-37页 |
| ·测定波长的选择 | 第35-36页 |
| ·反应体系的优化 | 第36页 |
| ·标记试剂用量的优化 | 第36页 |
| ·萃取试剂的优化 | 第36-37页 |
| ·样品的检测 | 第37-38页 |
| ·体外药物原型的检测 | 第37-38页 |
| ·体外降解药物的检测 | 第38页 |
| ·血清中样品衍生方法的研究 | 第38-42页 |
| ·血清样品的处理 | 第38-39页 |
| ·血清样品衍生剩余标记试剂的去除 | 第39-40页 |
| ·内标条件的优化 | 第40-42页 |
| 4 小结 | 第42-43页 |
| 第三章 PMP 柱前紫外衍生高效液相色谱分析 | 第43-52页 |
| 1 材料及仪器 | 第44页 |
| ·实验材料 | 第44页 |
| ·主要仪器 | 第44页 |
| 2 实验方法 | 第44-47页 |
| ·HS203 最佳降解条件的确定 | 第44-45页 |
| ·犬血清样品的前处理 | 第45页 |
| ·犬血清样品的降解 | 第45-46页 |
| ·PMP 衍生化反应 | 第46页 |
| ·色谱条件 | 第46页 |
| ·标准曲线的绘制 | 第46页 |
| ·注射样品的分析 | 第46-47页 |
| 3 结果与讨论 | 第47-51页 |
| ·HS203 最佳降解条件的确定 | 第47-48页 |
| ·犬血清样品的前处理 | 第48页 |
| ·样品的降解、衍生和色谱分析 | 第48-49页 |
| ·标准曲线的绘制 | 第49-51页 |
| 4 结论 | 第51-52页 |
| 第四章 HS203 柱后荧光衍生高效液相色谱分析 | 第52-79页 |
| 1 材料与仪器 | 第53-54页 |
| ·实验材料 | 第53页 |
| ·主要仪器 | 第53-54页 |
| 2 实验方法 | 第54-59页 |
| ·样品的衍生 | 第54-55页 |
| ·衍生试剂的选择 | 第54页 |
| ·衍生试剂浓度对衍生效率的影响 | 第54-55页 |
| ·温度对衍生效率的影响 | 第55页 |
| ·氢氧化钠浓度对衍生效率的影响 | 第55页 |
| ·硼砂的加入对衍生效率的影响 | 第55页 |
| ·血清样品的前处理 | 第55-56页 |
| ·超滤与乙腈处理的比较 | 第55-56页 |
| ·超滤次数的比较 | 第56页 |
| ·超滤处理不同盐浓度的筛选 | 第56页 |
| ·色谱柱的筛选 | 第56-57页 |
| ·Aminex HPX-87H Ion Exclusion 色谱柱 | 第56-57页 |
| ·Shodex Asahipak GS-320 HQ 色谱柱 | 第57页 |
| ·流动相的优化 | 第57页 |
| ·甲醇比例的调整 | 第57页 |
| ·各种盐溶液的筛选 | 第57页 |
| ·方法学评价 | 第57-59页 |
| ·标准曲线的制备 | 第58页 |
| ·回收率实验及检测限 | 第58页 |
| ·日间、日内精密度实验 | 第58页 |
| ·稳定性实验 | 第58-59页 |
| ·静脉注射样品的检测 | 第59页 |
| ·PAGE 法的验证 | 第59页 |
| 3 结果与讨论 | 第59-77页 |
| ·样品的衍生 | 第59-62页 |
| ·衍生试剂的选择 | 第59-60页 |
| ·衍生试剂浓度对衍生效率的影响 | 第60-61页 |
| ·温度对衍生效率的影响 | 第61页 |
| ·氢氧化钠浓度对衍生效率的影响 | 第61-62页 |
| ·硼砂的加入对衍生效率的影响 | 第62页 |
| ·血清样品的前处理 | 第62-65页 |
| ·超滤与乙腈处理的比较 | 第62-63页 |
| ·超滤次数的比较 | 第63-65页 |
| ·超滤不同盐浓度的筛选 | 第65页 |
| ·色谱柱的筛选 | 第65-67页 |
| ·Aminex HPX-87H Ion Exclusion 色谱柱 | 第65-67页 |
| ·Shodex Asahipak GS-320 HQ 色谱柱 | 第67页 |
| ·流动相的优化 | 第67-72页 |
| ·甲醇比例的调整 | 第67-68页 |
| ·各种盐溶液的筛选 | 第68-72页 |
| ·方法学评价 | 第72-74页 |
| ·标准曲线的制备及线性范围 | 第72-73页 |
| ·回收率实验及检测限 | 第73页 |
| ·日间、日内精密度实验 | 第73-74页 |
| ·稳定性实验 | 第74页 |
| ·静脉注射样品的检测 | 第74-77页 |
| ·PAGE 法的验证 | 第77页 |
| 4 小结 | 第77-79页 |
| 结语 | 第79-82页 |
| 一、主要结论 | 第79-80页 |
| 二、创新点 | 第80-82页 |
| 参考文献 | 第82-92页 |
| 致谢 | 第92-93页 |
| 个人简历及参与发表的学术论文 | 第93页 |
| 个人简历 | 第93页 |
| 参与发表的学术论文 | 第93页 |
| 在校期间获得的奖励 | 第93页 |
