| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 缩略词表 | 第10-11页 |
| 1 前言 | 第11-21页 |
| ·鸭肝炎病毒的流行与分布 | 第11-12页 |
| ·DHV-1的分类地位与基因组结构 | 第12页 |
| ·DHV-1的病原特性 | 第12-13页 |
| ·DHV-1研究进展 | 第13-16页 |
| ·病毒的分布规律 | 第13页 |
| ·组织病理学与生化反应 | 第13-15页 |
| ·DHV-1的基因组结构及功能 | 第15-16页 |
| ·细胞凋亡 | 第16-19页 |
| ·细胞凋亡的机制 | 第16-18页 |
| ·小RNA病毒与细胞凋亡 | 第18-19页 |
| ·DHV与细胞凋亡 | 第19页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第19-21页 |
| 2 试验材料与方法 | 第21-29页 |
| ·试验材料 | 第21-23页 |
| ·毒株、质粒与试验动物 | 第21页 |
| ·工具酶及主要试剂 | 第21页 |
| ·主要仪器设备 | 第21-22页 |
| ·主要溶液及其配制 | 第22-23页 |
| ·病毒的增殖 | 第23页 |
| ·动物试验和处理 | 第23页 |
| ·HE和TUNEL染色 | 第23-24页 |
| ·血液和组织RNA的提取 | 第24页 |
| ·实时荧光定量PCR检测血液中的病毒含量 | 第24-27页 |
| ·引物设计与合成 | 第24-25页 |
| ·RT-PCR扩增 | 第25-26页 |
| ·荧光定量PCR检测DHV-1方法的建立 | 第26页 |
| ·特异性试验 | 第26页 |
| ·实时荧光定量PCR检测全血中病毒含量的变化 | 第26-27页 |
| ·实时荧光定量PCR检测组织中凋亡相关基因的表达变化 | 第27-28页 |
| ·凋亡相关基因引物的设计与合成 | 第27页 |
| ·PCR扩增Caspase-3、Caspase-8、Caspase-9、Bcl-2、β-actin | 第27-28页 |
| ·凋亡相关基因在4日龄和21日龄雏鸭不同组织中的表达 | 第28页 |
| ·数据分析 | 第28-29页 |
| 3 结果 | 第29-41页 |
| ·临床症状及病理学变化 | 第29-31页 |
| ·DHV-1荧光定量PCR检测方法的建立 | 第31页 |
| ·感染雏鸭血液中病毒含量的变化 | 第31-32页 |
| ·实时荧光定量PCR检测凋亡相关基因mRNA的表达变化 | 第32-39页 |
| ·细胞总RNA的提取与反应条件的优化 | 第32-33页 |
| ·荧光定量PCR检测β-actin与凋亡基因的扩增曲线和熔解曲线 | 第33-34页 |
| ·凋亡相关基因在4日龄雏鸭感染后不同组织中的表达 | 第34-35页 |
| ·凋亡相关基因在21日龄雏鸭感染后不同组织中的表达 | 第35-39页 |
| ·DHV-1感染后肝脏和脾脏细胞凋亡率的动态变化 | 第39-41页 |
| 4 讨论 | 第41-49页 |
| ·细胞凋亡对病毒增殖的作用 | 第41-42页 |
| ·DHV-1感染后相关凋亡基因的表达 | 第42-43页 |
| ·DHV-1感染与细胞凋亡 | 第43-44页 |
| ·细胞凋亡在病毒感染过程中对肝脏的影响 | 第44-45页 |
| ·细胞凋亡在病毒感染过程中对脾脏的影响 | 第45-46页 |
| ·细胞凋亡在病毒感染过程中对肾脏的影响 | 第46-47页 |
| ·细胞凋亡研究方法 | 第47-49页 |
| 5 结论 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-59页 |
| 致谢 | 第59页 |
