| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 缩略语表 | 第7-11页 |
| 1 绪论 | 第11-23页 |
| ·天然生物活性物质抗病毒研究进展 | 第11-13页 |
| ·动物生物活性物质抗病毒研究进展 | 第11-12页 |
| ·植物生物活性物质抗病毒研究进展 | 第12-13页 |
| ·天然生物活性物质抗病毒机制的研究 | 第13-15页 |
| ·多糖 | 第13-14页 |
| ·抗生素 | 第14页 |
| ·抗菌肽 | 第14-15页 |
| ·两栖类蛙皮抗菌肽抗病毒活性研究 | 第15-19页 |
| ·两栖类皮肤结构 | 第15页 |
| ·两栖类抗菌肽的研究 | 第15-17页 |
| ·两栖类抗菌肽功能多样性 | 第17-18页 |
| ·两栖类抗菌肽抗菌作用机理 | 第18-19页 |
| ·两栖类抗菌肽抗病毒作用机理 | 第19页 |
| ·两栖类抗菌肽的应用 | 第19页 |
| ·两栖类蛙皮活性肽抗病毒活性研究 | 第19-23页 |
| ·HPLC分离多肽原理及实验设计 | 第19-20页 |
| ·SAH水解酶为靶位点的抗病毒药物筛选方法 | 第20页 |
| ·体外抗病毒药物的筛选方法 | 第20-21页 |
| ·课题设计 | 第21-23页 |
| 2 东北林蛙皮肤活性肽的提取及分离纯化 | 第23-34页 |
| ·材料 | 第23-24页 |
| ·实验动物 | 第23页 |
| ·材料和试剂 | 第23页 |
| ·仪器 | 第23-24页 |
| ·方法 | 第24-25页 |
| ·东北林蛙皮肤活性肽的提取 | 第24页 |
| ·东北林蛙皮肤活性肽的Sephadex纯化 | 第24页 |
| ·东北林蛙皮肤活性肽dybowskii C HPLC分离条件的优化 | 第24页 |
| ·东北林蛙皮肤活性肽dybowskii C的HPLC制备 | 第24-25页 |
| ·考马斯亮蓝法测定分离产物的浓度 | 第25页 |
| ·结果与分析 | 第25-33页 |
| ·东北林蛙皮肤活性肽粗提物的收获率 | 第25页 |
| ·东北林蛙皮肤活性肽粗提物的纯化 | 第25-28页 |
| ·东北林蛙皮肤活性肽HPLC分离条件的优化结果 | 第28-31页 |
| ·HPLC纯化东北林蛙皮肤活性肽组分dybowskii C | 第31-32页 |
| ·考马斯亮蓝法测定分离产物的浓度结果 | 第32-33页 |
| ·讨论 | 第33-34页 |
| 3 HPLC纯化活性肽dybowskii对SAH水解酶的抑制作用 | 第34-40页 |
| ·材料 | 第34页 |
| ·材料和试剂 | 第34页 |
| ·仪器 | 第34页 |
| ·方法 | 第34-35页 |
| ·SAH水解酶的提取 | 第34页 |
| ·SAH水解酶活性测定 | 第34-35页 |
| ·HPLC纯化活性肽dybowskii对SAH水解酶活性的抑制作用 | 第35页 |
| ·结果与分析 | 第35-39页 |
| ·空白对照曲线及SAH水解酶活性组分 | 第35-36页 |
| ·HPLC纯化活性肽dybowskii对SAH水解酶活性的抑制曲线 | 第36-39页 |
| ·讨论 | 第39-40页 |
| 4 东北林蛙皮肤活性肽dybowskii体外抗病毒的研究 | 第40-54页 |
| ·材料 | 第40页 |
| ·材料和试剂 | 第40页 |
| ·仪器 | 第40页 |
| ·方法 | 第40-44页 |
| ·药品配制 | 第40-41页 |
| ·细胞培养 | 第41-42页 |
| ·筛选活性肽的细胞毒性分析 | 第42-43页 |
| ·人流感病毒283C-1的体外增殖 | 第43页 |
| ·病毒毒力测定 | 第43-44页 |
| ·数据处理 | 第44页 |
| ·结果与分析 | 第44-51页 |
| ·细胞生长曲线 | 第44-45页 |
| ·筛选活性肽dybowskii对细胞的毒性分析结果 | 第45-46页 |
| ·病毒毒力测定结果 | 第46-47页 |
| ·筛选活性肽dybowskii抗病毒活性机理分析 | 第47-51页 |
| ·讨论 | 第51-54页 |
| ·采用体外细胞培养法来筛选抗病毒活性物质 | 第51-52页 |
| ·东北林蛙皮肤活性肽抗流感病毒初步作用机理 | 第52-54页 |
| 结论 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-64页 |
| 附录A | 第64-65页 |
| 附录B | 第65-66页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第66-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
