| 提要 | 第1-9页 |
| 英文缩写 | 第9-10页 |
| 第一章 绪论 | 第10-31页 |
| 1 镉的理化性质 | 第10页 |
| 2 镉的生物效应 | 第10-11页 |
| 3 镉的心脏毒性 | 第11-13页 |
| 4 镉与DNA 损伤 | 第13-15页 |
| 5 镉与钙及钙调蛋白 | 第15-16页 |
| 6 镉与金属硫蛋白 | 第16-17页 |
| 7 镉与细胞凋亡 | 第17-31页 |
| ·凋亡的特征 | 第17-18页 |
| ·细胞凋亡的检测方法 | 第18-20页 |
| ·凋亡调控基因 | 第20-29页 |
| ·镉与心肌细胞凋亡 | 第29-31页 |
| 第二章 材料和方法 | 第31-45页 |
| 1 主要试剂及器材 | 第31-32页 |
| ·主要试剂 | 第31-32页 |
| ·主要器材 | 第32页 |
| 2 主要仪器 | 第32-33页 |
| 3 细胞培养 | 第33-35页 |
| ·细胞株 | 第33页 |
| ·培养液配制 | 第33-34页 |
| ·血清保存 | 第34页 |
| ·D-Hank’s 液的配制 | 第34页 |
| ·胰酶的配制 | 第34页 |
| ·培养方法 | 第34-35页 |
| ·细胞冻存 | 第35页 |
| 4 细胞生物学方法 | 第35-37页 |
| ·MTT 法检测细胞存活率 | 第35页 |
| ·AO/EB 染色法检测细胞凋亡 | 第35-36页 |
| ·FCM 检测细胞凋亡 | 第36页 |
| ·单细胞凝胶电泳法检测DNA 损伤 | 第36-37页 |
| 5 免疫细胞化学法检测蛋白表达 | 第37-38页 |
| 6 分子生物学方法 | 第38-44页 |
| ·细胞总蛋白的提取及定量 | 第38-40页 |
| ·聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第40-41页 |
| ·Western 印迹 | 第41-42页 |
| ·封闭 | 第42页 |
| ·抗体孵育 | 第42页 |
| ·DAB 显色 | 第42页 |
| ·细胞总RNA 提取 | 第42-43页 |
| ·RNA 的定量 | 第43页 |
| ·引物设计及合成 | 第43页 |
| ·RT-PCR 检测基因mRNA 水平表达 | 第43-44页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳 | 第44页 |
| 7 统计学方法 | 第44-45页 |
| 第三章 结果 | 第45-62页 |
| 1 细胞存活率检测 | 第45-47页 |
| 2 细胞DNA 损伤情况 | 第47-51页 |
| 3 AO/EB 染色法检测细胞凋亡 | 第51-53页 |
| 4 FCM 检测细胞凋亡 | 第53-55页 |
| 5 PARP 活性的检测 | 第55页 |
| 6 凋亡相关基因蛋白表达变化 | 第55-60页 |
| ·Bcl-2、Bax 蛋白表达变化 | 第55-57页 |
| ·Cyt c 蛋白表达变化 | 第57-58页 |
| ·caspase - 9 蛋白表达变化 | 第58-59页 |
| ·AIF 蛋白表达变化 | 第59-60页 |
| 7 Bcl-2 基因mRNA 水平表达变化 | 第60-62页 |
| 第四章 讨论 | 第62-69页 |
| 1 CdCl_2 对大鼠心肌细胞H9c2 的毒性作用 | 第62-63页 |
| 2 CdCl_2 引起大鼠心肌细胞H9c2 DNA 损伤 | 第63-64页 |
| 3 CdCl_2 导致大鼠心肌细胞H9c2 细胞凋亡 | 第64-65页 |
| 4 CdCl_2 引起凋亡相关基因蛋白表达变化 | 第65-66页 |
| 5 CdCl_2 引起H9c2 细胞凋亡的分子机制探讨 | 第66-69页 |
| 结论 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-87页 |
| 攻博期间发表的学术论文及其他成果 | 第87-88页 |
| 中文摘要 | 第88-92页 |
| Abstract | 第92-97页 |
| 致谢 | 第97页 |
