| 符号说明 | 第1-7页 |
| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 1. 引言 | 第11-24页 |
| ·诱变技术的研究进展 | 第13-17页 |
| ·诱变及其研究意义 | 第13页 |
| ·诱变方法分类 | 第13-17页 |
| ·物理诱变 | 第13-15页 |
| ·化学诱变 | 第15-17页 |
| ·人工诱变突变体库的构建方法 | 第17-19页 |
| ·物理、化学诱变法 | 第17-18页 |
| ·T-DNA 插入法 | 第18页 |
| ·转座子标签法 | 第18-19页 |
| ·TILLING 的研究进展 | 第19-20页 |
| ·TILLING 技术的发展 | 第19-20页 |
| ·TILLING 技术在麦类作物上的应用 | 第20页 |
| ·水杨酸抗病途径的研究进展 | 第20-23页 |
| ·水杨酸和水杨酸抗病途径 | 第20-21页 |
| ·模式植物水杨酸抗病途径的研究进展 | 第21页 |
| ·EDR1 与NPR1 基因 | 第21-23页 |
| ·研究的目的与意义 | 第23-24页 |
| 2. 材料与方法 | 第24-30页 |
| ·实验材料 | 第24页 |
| ·实验方法 | 第24-30页 |
| ·大麦突变群体的获得 | 第24页 |
| ·CEL I 酶切体系的建立 | 第24-26页 |
| ·CEL I 酶的提取 | 第24-26页 |
| ·CEL I 酶活性检测及酶切体系的验证 | 第26页 |
| ·水杨酸抗病途径上EDR1 基因和NPR1 基因的筛选 | 第26-27页 |
| ·突变体功能预测 | 第27页 |
| ·DNA 提取方法 | 第27-28页 |
| ·PCR 扩增体系及程序 | 第28页 |
| ·PCR 体系 | 第28页 |
| ·PCR 程序 | 第28页 |
| ·CEL I 酶酶切体系 | 第28页 |
| ·聚丙烯酰胺凝胶电泳（3%） | 第28-30页 |
| 3. 结果与分析 | 第30-41页 |
| ·大麦TILLING 突变群体的构建 | 第30-33页 |
| ·CEL I 酶切体系的建立 | 第33-35页 |
| ·CEL I 酶的提取及活性检测 | 第33页 |
| ·CEL I 酶酶切体系的确定 | 第33-35页 |
| ·水杨酸抗病途径上EDR1 基因和NPR1 基因的筛选 | 第35-41页 |
| ·SA 途径上EDR1 基因和NPR1 基因的确定 | 第35-36页 |
| ·EDR1 和NPR1 突变池的筛选，突变体的鉴定及功能预测 | 第36-41页 |
| ·EDR1 基因和NPR1 基因突变池的筛选，突变体的鉴定 | 第36-38页 |
| ·突变体功能的预测 | 第38-41页 |
| 4. 讨论 | 第41-44页 |
| ·TILLING 技术在麦类作物功能基因组研究中的应用 | 第41页 |
| ·CEL I 酶切体系的建立 | 第41-42页 |
| ·水杨酸信号通路相关基因突变体的获得 | 第42页 |
| ·群体突变频率 | 第42-44页 |
| 5. 结论 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-52页 |
| 附录 | 第52-54页 |
| 致谢 | 第54-55页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第55-56页 |
| 硕士学位论文内容简介及自评 | 第56页 |
