苦瓜降糖多肽-P的分离纯化及降糖机理研究
摘要 | 第1-11页 |
Abstract | 第11-13页 |
缩略表 | 第13-14页 |
第一章绪论 | 第14-26页 |
·苦瓜的营养价值 | 第14页 |
·苦瓜的药用价值 | 第14页 |
·苦瓜的生物活性研究进展 | 第14-16页 |
·降低血糖作用 | 第14-15页 |
·苦瓜制剂的降糖作用 | 第14-15页 |
·苦瓜复方制剂的降血糖作用 | 第15页 |
·抗病毒及肿瘤活性 | 第15页 |
·抗生育作用 | 第15-16页 |
·杭菌作用 | 第16页 |
·毒性 | 第16页 |
·苦瓜降糖作用的国内外研究进展 | 第16-19页 |
·苦瓜降糖成分的研究进展 | 第16-17页 |
·多肽类化合物的降血糖活性 | 第16-17页 |
·苷类化合物的降糖活性 | 第17页 |
·苦瓜中不同降血糖成分之间的相互作用 | 第17页 |
·苦瓜降血糖机理的研究进展 | 第17-18页 |
·对胰脏及β细胞的保护作用 | 第18页 |
·促进胰岛素的分泌 | 第18页 |
·胰岛外效应 | 第18页 |
·苦瓜降糖作用进一步研究的问题 | 第18-19页 |
·立题背景和意义 | 第19-20页 |
·主要研究内容 | 第20页 |
参考文献 | 第20-26页 |
第二章 苦瓜降糖肽的筛选 | 第26-40页 |
·材料与方法 | 第26-29页 |
·实验材料与设备 | 第26-27页 |
·实验材料 | 第26页 |
·实验设备 | 第26-27页 |
·实验方法 | 第27-29页 |
·苦瓜降糖肽的超滤工艺 | 第27-28页 |
·苦瓜汁超滤工艺条件 | 第28页 |
·营养成分测定方法 | 第28页 |
·超滤工艺指标 | 第28页 |
·降糖活性测定 | 第28-29页 |
·数据分析 | 第29页 |
·结果与讨论 | 第29-39页 |
·苦瓜营养成分分析 | 第29页 |
·苦瓜多糖及多肽标准曲线 | 第29-30页 |
·10kD 膜超滤工艺优化 | 第30-32页 |
·超滤条件的优化 | 第30-31页 |
·膜通量和超滤时间的关系 | 第31页 |
·10kD 膜截留率与料液浓缩倍数关系 | 第31-32页 |
·超滤时间与料液温度变化关系 | 第32页 |
·3kD 膜超滤 | 第32-34页 |
·3kD 膜超滤压力对膜通量的影响 | 第32-33页 |
·3kD 膜通量与超滤时间的关系 | 第33页 |
·3kD 膜截流滤与料液浓缩倍数的关系 | 第33-34页 |
·1kD 膜超滤 | 第34-36页 |
·1kD 膜超滤压力对膜通量的影响 | 第34-35页 |
·1kD 膜通量与超滤时间的关系 | 第35页 |
·1kD 膜截流滤与料液浓缩倍数的关系 | 第35-36页 |
·苦瓜超滤组分降糖效果 | 第36-37页 |
·苦瓜超滤组分汁对正常小鼠血糖的影响 | 第36页 |
·苦瓜超滤组分对四氧嘧啶糖尿病小鼠血糖的影响 | 第36-37页 |
·苦瓜汁组分分析 | 第37-38页 |
·膜的清洗 | 第38-39页 |
·本章小结 | 第39页 |
参考文献 | 第39-40页 |
第三章 苦瓜多肽-P的分离纯化及序列测定 | 第40-53页 |
·材料与方法 | 第40-43页 |
·实验材料与设备 | 第40-41页 |
·实验材料 | 第40页 |
·主要设备 | 第40-41页 |
·实验方法 | 第41-43页 |
·苦瓜多肽提取 | 第41页 |
·苦瓜多肽紫外扫描 | 第41页 |
·SDS-PAGE 凝胶电泳 | 第41-42页 |
·皂苷显色反应 | 第42页 |
·薄层层析 | 第42-43页 |
·成分测定方法 | 第43页 |
·降糖活性测定 | 第43页 |
·氨基酸序列测定 | 第43页 |
·数据处理 | 第43页 |
·结果与讨论 | 第43-51页 |
·凝胶层析分离 | 第43-45页 |
·凝胶分离 | 第43-44页 |
·苦瓜多肽 P1、P2 对小鼠血糖的影响 | 第44页 |
·P2 组分分析 | 第44-45页 |
·反相高效液相色谱纯化 | 第45-48页 |
·上样量选择 | 第45-46页 |
·梯度洗脱条件选择 | 第46-48页 |
·苦瓜多肽PA 的鉴定 | 第48-50页 |
·薄层层析 | 第48页 |
·SDS-PAGE 凝胶电泳 | 第48-49页 |
·氨基酸组成分析 | 第49-50页 |
·苦瓜降糖多肽-P 的氨基酸序列 | 第50-51页 |
·本章小结 | 第51-52页 |
参考文献 | 第52-53页 |
第四章 苦瓜多肽-P 的降糖效果与机理研究 | 第53-66页 |
·材料与方法 | 第53-55页 |
·实验材料与设备 | 第53-54页 |
·实验材料 | 第53-54页 |
·主要设备 | 第54页 |
·实验方法 | 第54-55页 |
·高脂实验日粮配制 | 第54页 |
·动物分组 | 第54-55页 |
·糖耐量测定 | 第55页 |
·血清胰岛素浓度及胰岛素敏感指数测定 | 第55页 |
·肝糖原/肌糖原含量测定 | 第55页 |
·血脂指标的测定 | 第55页 |
·体重及采食量测定 | 第55页 |
·数据处理 | 第55页 |
·结果与讨论 | 第55-62页 |
·2 型肥胖型糖尿病动物模型的建立 | 第55-56页 |
·苦瓜多肽-P 对空腹血糖和葡萄糖耐量的影响 | 第56-57页 |
·苦瓜多肽-P 对胰岛素抵抗的影响 | 第57-60页 |
·苦瓜多肽-P 对血清胰岛素的影响 | 第57-58页 |
·苦瓜多肽-P 对胰岛素抵抗的影响 | 第58-59页 |
·苦瓜多肽-P 对肝脏、肌肉组织糖代谢的影响 | 第59-60页 |
·苦瓜多肽-P 对大鼠采食量及体重的影响 | 第60-61页 |
·苦瓜多肽-P 对大鼠血脂代谢的影响 | 第61-62页 |
·苦瓜多肽-P 与苦瓜降糖效果比较 | 第62页 |
·本章小结 | 第62-63页 |
参考文献 | 第63-66页 |
第五章 苦瓜多肽-P 对糖尿病并发症的防治 | 第66-74页 |
·实验材料与方法 | 第66-68页 |
·实验材料与设备 | 第66-67页 |
·实验材料 | 第66页 |
·实验设备 | 第66-67页 |
·实验方法 | 第67-68页 |
·肝组织匀浆液制备 | 第67页 |
·总抗氧化能力测定 | 第67页 |
·超氧化物酶(SOD)测定 | 第67-68页 |
·过氧化氢(H202)含量测定 | 第68页 |
·丙二醛(MDA)含量测定 | 第68页 |
·组织中总蛋白含量的测定 | 第68页 |
·数据处理 | 第68页 |
·结果与讨论 | 第68-71页 |
·苦瓜多肽-P 对糖尿病大鼠总抗氧化能力的影响 | 第69页 |
·苦瓜多肽-P 对糖尿病大鼠自由基的影响 | 第69-70页 |
·苦瓜多肽-P 对糖尿病大鼠 SOD 活力的影响 | 第70-71页 |
·苦瓜多肽-P 防治糖尿病并发症的机理探讨 | 第71页 |
·本章小结 | 第71-72页 |
参考文献 | 第72-74页 |
第六章 苦瓜多肽-P 的结构预测及构效关系研究 | 第74-100页 |
·材料与方法 | 第75-76页 |
·实验材料与设备 | 第75页 |
·实验材料 | 第75页 |
·实验设备 | 第75页 |
·实验方法 | 第75-76页 |
·苦瓜多肽-P氨基酸序列理论分析 | 第75页 |
·苦瓜多肽-P样品制备 | 第75-76页 |
·苦瓜多肽-P对小鼠血糖的影响 | 第76页 |
·数据处理 | 第76页 |
·结果与讨论 | 第76-94页 |
·分子量、分子式及等电点计算 | 第76-77页 |
·同源性比较 | 第77-79页 |
·苦瓜多肽-P 结构预测 | 第79-85页 |
·苦瓜多肽-P 二级结构预测 | 第79-82页 |
·苦瓜多肽-P疏水性结构分析 | 第82页 |
·苦瓜多肽-P 三级结构预测 | 第82-83页 |
·苦瓜多肽-P球形结构预测 | 第83-84页 |
·跨膜结构分析 | 第84-85页 |
·苦瓜多肽-P 的酶解肽段研究 | 第85-88页 |
·苦瓜多肽-P 酶切位点预测 | 第85-86页 |
·苦瓜多肽-P 酶解后对小鼠血糖的影响 | 第86-88页 |
·苦瓜多肽-P保守序列肽段研究 | 第88-94页 |
·模体搜索苦瓜多肽-P 的保守序列肽段 | 第88-89页 |
·苦瓜多肽-P 通过 PKC 发挥降糖作用 | 第89-93页 |
·苦瓜多肽-P 通过 PKA 发挥降糖作用 | 第93页 |
·苦瓜多肽-P 减缓糖尿病并发症的机理探讨 | 第93-94页 |
·本章小结 | 第94-95页 |
参考文献 | 第95-100页 |
主要结论 | 第100-102页 |
论文创新点 | 第102-103页 |
攻读博士学位期间发表论文情况 | 第103-104页 |
致谢 | 第104-105页 |
附录 | 第105-111页 |