| 摘要 | 第1-14页 |
| Abstract | 第14-16页 |
| 前言 | 第16-31页 |
| 第一章 DSF—HPβCD包合物的制备 | 第31-47页 |
| 1 仪器与材料 | 第31-32页 |
| 2 试验部分 | 第32-36页 |
| ·DSF的分析方法—HPLC | 第32-33页 |
| ·DSF—HPβCD的相溶解度 | 第33-34页 |
| ·高效液相法研究包合物的形成 | 第34页 |
| ·DSF—HPβCD包合物的制备 | 第34-35页 |
| ·溶液搅拌法 | 第35页 |
| ·超声波法 | 第35页 |
| ·直接混合法 | 第35页 |
| ·DSF—HPβCD包合物的鉴定 | 第35-36页 |
| 3 结果与讨论 | 第36-45页 |
| ·DSF-HPβCD包合的稳定常数及意义 | 第36-39页 |
| ·DSF的相溶解度图及包合物稳定常数 | 第36-37页 |
| ·HPLC法求算包合物稳定常数 | 第37-39页 |
| ·包合反应的热力学参数计算和分析 | 第39-41页 |
| ·包合物制备方法及工艺 | 第41-42页 |
| ·DSF—HPβCD包合物的鉴定 | 第42-45页 |
| 4 本章小结 | 第45-46页 |
| 5 参考文献 | 第46-47页 |
| 第二章 DSF—HPβCD包合物的角膜透过性研究 | 第47-71页 |
| 1 仪器与材料 | 第47-48页 |
| 2 试验部分 | 第48-58页 |
| ·分析方法的确立 | 第48-51页 |
| ·离体角膜上DSF—HPβCD包合物的透过性 | 第51-55页 |
| ·分析方法的系统适用性 | 第51-53页 |
| ·离体角膜的制备 | 第53页 |
| ·离体角膜透过实验 | 第53-54页 |
| ·粘度的测定 | 第54-55页 |
| ·角膜水化值测定 | 第55页 |
| ·数据处理 | 第55页 |
| ·角膜匀浆中前药DSF转变为活性化合物DDC的研究 | 第55-58页 |
| ·角膜匀浆的制备 | 第55-56页 |
| ·分析方法的系统适用性 | 第56-57页 |
| ·角膜匀浆中DSF和DDC的稳定性 | 第57页 |
| ·角膜匀浆中DSF的代谢 | 第57-58页 |
| ·米氏常数的测定 | 第58页 |
| 3 结果与讨论 | 第58-69页 |
| ·DSF-HPβCD浓度与DDC角膜透过量 | 第58-60页 |
| ·缓冲盐种类与DDC的角膜透过量 | 第60-61页 |
| ·水溶性高分子聚合物与DDC的角膜透过量 | 第61-63页 |
| ·渗透促进剂与DDC的角膜透过量 | 第63-65页 |
| ·溶液粘度与DDC的角膜透过量 | 第65页 |
| ·DSF在角膜匀浆中的代谢及反应的米氏常数 | 第65-68页 |
| ·DDC的前药DSF透过角膜机制分析 | 第68-69页 |
| 4 本章小结 | 第69-70页 |
| 5 参考文献 | 第70-71页 |
| 第三章 DSF—HPβCD滴眼剂的研制及家兔眼内药物动力学 | 第71-85页 |
| 1 仪器与材料 | 第71-72页 |
| 2 试验部分 | 第72-78页 |
| ·DSF—HPβCD滴眼剂的研制 | 第72-75页 |
| ·正交设计优化处方 | 第72-73页 |
| ·房水的抽取和测定 | 第73-75页 |
| ·眼刺激性评价 | 第75页 |
| ·滴眼剂稳定性评价 | 第75页 |
| ·DSF—HP β CD滴眼剂的性质 | 第75-76页 |
| ·粘度的测定 | 第75页 |
| ·渗透压的测定 | 第75页 |
| ·表面张力测定 | 第75-76页 |
| ·DSF—HP β CD滴眼剂的刺激性 | 第76页 |
| ·DSF—HP β CD滴眼剂的稳定性 | 第76-77页 |
| ·DSF—HP β CD滴眼剂家兔眼内药物动力学 | 第77-78页 |
| ·给药与采样 | 第77-78页 |
| ·药动学参数分析 | 第78页 |
| 3 结果与讨论 | 第78-83页 |
| ·DSF—HP β CD滴眼剂处方的确定 | 第78-79页 |
| ·DSF—HP β CD滴眼剂的性质 | 第79-80页 |
| ·DSF—HP β CD滴眼剂的刺激性 | 第80页 |
| ·DSF—HP β CD滴眼剂的稳定性 | 第80-81页 |
| ·家兔眼内药物动力学分析 | 第81-83页 |
| 4 本章小结 | 第83-84页 |
| 5 参考文献 | 第84-85页 |
| 第四章 DSF—HP β CD包合物滴眼剂的药效 | 第85-100页 |
| 1 仪器与材料 | 第85-86页 |
| 2 试验部分 | 第86-89页 |
| ·对遗传性白内障大鼠的药效 | 第86页 |
| ·对亚硒酸钠致大鼠急性白内障的药效 | 第86页 |
| ·对白内障发展程度的监测及量化 | 第86页 |
| ·DSF对白内障晶体生化性质改变的影响 | 第86-88页 |
| ·水溶性蛋白和非水溶性蛋白的分离和定量 | 第87页 |
| ·非蛋白巯基含量的测定 | 第87页 |
| ·总巯基及蛋白质巯基的测定 | 第87页 |
| ·晶体不溶性蛋白质中二硫键的测定 | 第87-88页 |
| ·脂类过氧化水平的测定 | 第88页 |
| ·钙浓度测定 | 第88页 |
| ·统计学分析 | 第88-89页 |
| 3 结果与讨论 | 第89-97页 |
| ·对遗传性白内障模型大鼠的药效 | 第89-91页 |
| ·对急性白内障模型大鼠的药效 | 第91-93页 |
| ·对硒性白内障模型大鼠晶状体生化改变的影响 | 第93-97页 |
| ·对水溶性、非水溶性蛋白含量的影响 | 第93-94页 |
| ·对晶状体巯基含量的变化影响 | 第94-96页 |
| ·对脂类过氧化水平的影响 | 第96页 |
| ·对晶状体中Ca~(2+)浓度的影响 | 第96-97页 |
| 4 本章小结 | 第97-98页 |
| 5 参考文献 | 第98-100页 |
| 第五章 DDC对iNOS在人晶体上皮细胞中表达的抑制作用 | 第100-118页 |
| 1 仪器与材料 | 第100-102页 |
| 2 试验部分 | 第102-108页 |
| ·细胞培养 | 第102页 |
| ·iNOS mRNA的检测 | 第102-104页 |
| ·总RNA的提取及纯化 | 第102-103页 |
| ·逆转录—聚合酶链反应(RT-PCR) | 第103-104页 |
| ·iNOS蛋白的检测(Western Blot) | 第104-107页 |
| ·总蛋白的提取 | 第104-105页 |
| ·十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE) | 第105-106页 |
| ·蛋白的免疫印迹 | 第106-107页 |
| ·NO的测定 | 第107-108页 |
| 3 结果与讨论 | 第108-116页 |
| ·iNOS基因的诱导表达 | 第108-112页 |
| ·LPS诱导iNOS基因表达 | 第108-109页 |
| ·H_2O_2诱导iNOS基因表达 | 第109页 |
| ·INF-γ对诱导iNOS基因表达的诱导作用 | 第109-112页 |
| ·DDC对iNOS表达的抑制作用 | 第112-115页 |
| ·DDC与NO的合成 | 第115-116页 |
| 4 本章小结 | 第116页 |
| 5 参考文献 | 第116-118页 |
| 全文结论 | 第118-120页 |
| 致谢 | 第120-121页 |
| 发表文章目录 | 第121-122页 |
