| 第一章 绪论 | 第1-22页 |
| ·海洋生物资源及其利用概况 | 第8-9页 |
| ·鱼蛋白水解的国内外研究动态 | 第9-10页 |
| ·龙头鱼及其传统利用情况 | 第10-11页 |
| ·味觉传导的分子细胞生物学，神经生理学进展 | 第11-14页 |
| ·味觉的一般性叙述 | 第11-12页 |
| ·味觉传导元件 | 第12页 |
| ·味觉传导的分子机制 | 第12-14页 |
| ·味觉的分子识别理论 | 第14-15页 |
| ·蛋白质水解物的苦味及呈味机制 | 第15-17页 |
| ·苦味控制的方法 | 第17-20页 |
| ·本课题研究的目的、意义和内容 | 第20-22页 |
| 第二章 材料与方法 | 第22-36页 |
| ·仪器设备与材料 | 第22-24页 |
| ·主要试剂、材料 | 第22-23页 |
| ·主要仪器、设备 | 第23-24页 |
| ·实验方法 | 第24-34页 |
| ·实验分析检测方法 | 第24-27页 |
| ·龙头鱼的酶解方法 | 第24页 |
| ·总氮的测定(微量凯氏定氮法) | 第24页 |
| ·游离氨基氮的测定(甲醛固定法) | 第24-25页 |
| ·水解度的计算 | 第25页 |
| ·平均肽链长度(PCL)的估计 | 第25-26页 |
| ·酶活力的测定(Casein-Folin酚法) | 第26页 |
| ·碳水化合物含量的测定(苯酚-硫酸法) | 第26页 |
| ·苦味的评定 | 第26-27页 |
| ·实验分离纯化与表征方法 | 第27-32页 |
| ·有机溶剂萃取 | 第27页 |
| ·凝胶渗透色谱(GPC) | 第27-28页 |
| ·疏水相互作用色谱(HIC) | 第28-29页 |
| ·反相色谱(RP-HPLC) | 第29页 |
| ·SDS-PAGE电泳 | 第29-31页 |
| ·Tricine-SDS-PAGE电泳 | 第31页 |
| ·毛细管液相色谱法(cLC) | 第31-32页 |
| ·蛋白质固相测序 | 第32页 |
| ·实验数据处理分析方法 | 第32-34页 |
| ·SAS系统简介 | 第32页 |
| ·二次回归正交旋转设计 | 第32页 |
| ·响应面分析法 | 第32-34页 |
| ·实验流程 | 第34-36页 |
| ·龙头鱼蛋白酶解工艺的研究 | 第34页 |
| ·苦味肽的生化分离与表征 | 第34-35页 |
| ·苦味色谱评判体系的建立 | 第35-36页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第36-70页 |
| ·龙头鱼酶解工艺条件与产物组成研究 | 第36-47页 |
| ·酶解工艺研究 | 第36-45页 |
| ·基础实验数据的测定 | 第36页 |
| ·酶种类的选择 | 第36-40页 |
| ·酶活力的测定 | 第36-37页 |
| ·酶水解效率的比较 | 第37-38页 |
| ·水解物苦味程度及风味的比较 | 第38-40页 |
| ·蛋白酶水解龙头鱼蛋白最佳工艺条件的确定 | 第40-45页 |
| ·二次回归正交旋转实验设计 | 第40-42页 |
| ·数学模型回归与方差分析 | 第42-43页 |
| ·响应面分析 | 第43-45页 |
| ·酶解龙头鱼低分子肽制品及组成研究 | 第45-47页 |
| ·龙头鱼白酶解物中低分子苦味肽的色谱分离与表征 | 第47-59页 |
| ·苦味样品的制备 | 第47-49页 |
| ·苦味肽的生化分离 | 第49-56页 |
| ·色谱检测波长的选择 | 第49页 |
| ·分子量分布范围的测定及各分布范围的苦味鉴评 | 第49-53页 |
| ·POROS PE疏水色谱的分离 | 第53-54页 |
| ·LUNA C18反相色谱的分离 | 第54-56页 |
| ·苦味肽的生化表征 | 第56-59页 |
| ·苦味肽的纯度鉴定与分子量标定 | 第56-59页 |
| ·Tricine-SDS-PAGE分析 | 第56-58页 |
| ·cLC毛细管液相色谱分析 | 第58-59页 |
| ·苦味肽的N-末端序列测定 | 第59页 |
| ·龙头鱼蛋白酶解物苦味肽的色谱规律的寻找 | 第59-70页 |
| ·SDS-PAGE及Tricine-SDS-PAGE分析 | 第60-61页 |
| ·苦味肽在HW40S凝胶色谱上的分布规律及感官鉴评 | 第61-65页 |
| ·色谱峰面积与苦味的相关性分析 | 第65-70页 |
| 总结和展望 | 第70-72页 |
| 总结 | 第70-71页 |
| 展望 | 第71-72页 |
| 参考文献 | 第72-79页 |
| 致谢 | 第79-80页 |
| 个人简历 | 第80-81页 |