| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-6页 |
| 中文文摘 | 第6-11页 |
| 第1章 绪论 | 第11-27页 |
| ·DHA产生菌Schizochytrium sp.FJU-512背景介绍 | 第11-14页 |
| ·温度对高度不饱和脂肪酸合成的重要性 | 第14-19页 |
| ·高度不饱和脂肪酸概况 | 第14-15页 |
| ·DHA的研究概况 | 第15-17页 |
| ·温度对高度不饱和脂肪酸的影响 | 第17-19页 |
| ·比较蛋白质组学及其研究技术 | 第19-26页 |
| ·比较蛋白质组学的研究内容 | 第19-20页 |
| ·比较蛋白质组学的研究技术 | 第20-26页 |
| ·本课题的研究目的和意义 | 第26-27页 |
| 第2章 温度对裂殖壶菌FJU-512生长及脂肪酸组成的影响 | 第27-37页 |
| ·前言 | 第27页 |
| ·材料与方法 | 第27-28页 |
| ·菌株 | 第27页 |
| ·培养基 | 第27-28页 |
| ·主要仪器 | 第28页 |
| ·培养方法 | 第28页 |
| ·单菌落分离平板培养 | 第28页 |
| ·种子培养 | 第28页 |
| ·摇瓶发酵培养 | 第28页 |
| ·裂殖壶菌的生物量、总脂含量及脂肪酸组成的测定 | 第28-29页 |
| ·生物量测定 | 第28页 |
| ·总脂含量测定 | 第28-29页 |
| ·脂肪酸组成的测定 | 第29页 |
| ·结果与分析 | 第29-34页 |
| ·裂殖壶菌生物量和总脂含量测定 | 第29-32页 |
| ·裂殖壶菌脂肪酸组成菌测定 | 第32-34页 |
| ·小结与讨论 | 第34-37页 |
| 第3章 裂殖壶菌FJU-512可溶性蛋白的提取及双向电泳方法的建立 | 第37-51页 |
| ·前言 | 第37页 |
| ·材料 | 第37-40页 |
| ·材料菌株及培养基 | 第37页 |
| ·重要试剂配制 | 第37-39页 |
| ·主要仪器 | 第39-40页 |
| ·裂殖壶菌FJU-512上清蛋白的提取和处理 | 第40-41页 |
| ·玻璃珠破碎法 | 第40页 |
| ·苯酚抽提法 | 第40页 |
| ·超声波破碎法 | 第40页 |
| ·TCA沉淀法对提取蛋白质进行除盐处理 | 第40-41页 |
| ·TCA/丙酮沉淀法对提取蛋白质进行除盐处理 | 第41页 |
| ·裂殖壶菌的双向电泳 | 第41-46页 |
| ·Bradford法蛋白定量 | 第41页 |
| ·上清蛋白的比较选择 | 第41-43页 |
| ·双向电泳 | 第43-46页 |
| ·结果与分析 | 第46-50页 |
| ·Bradford法蛋白定量 | 第46页 |
| ·裂殖壶菌FJU-512上清蛋白的提取和处理 | 第46-48页 |
| ·IPG胶条pH范围的选择 | 第48页 |
| ·IPG胶条长度的选择 | 第48-50页 |
| ·小结与讨论 | 第50-51页 |
| 第4章 温度对裂殖壶菌FJU-512可溶性蛋白质表达差异的研究 | 第51-65页 |
| ·前言 | 第51页 |
| ·材料与方法 | 第51页 |
| ·菌株及其培养 | 第51页 |
| ·三种温度培养的裂殖壶菌FJU-512可溶性蛋白质双向电泳 | 第51页 |
| ·质谱鉴定 | 第51页 |
| ·结果与分析 | 第51-57页 |
| ·裂殖壶菌FJU-512不同温度发酵的差异蛋白质组学 | 第51-53页 |
| ·质谱结果分析 | 第53-57页 |
| ·小结与讨论 | 第57-65页 |
| 第5章 实时荧光定量PCR技术检测裂殖壶菌FJU-512温度敏感因子mRNA的表达 | 第65-79页 |
| ·前言 | 第65页 |
| ·材料与方法 | 第65-68页 |
| ·菌株及其培养 | 第65页 |
| ·主要试剂与仪器 | 第65-66页 |
| ·三种温度培养的裂殖壶菌RNA的提取 | 第66页 |
| ·反转录反应与PCR扩增 | 第66-68页 |
| ·裂殖壶菌SOD的生物信息学分析 | 第68页 |
| ·结果与分析 | 第68-77页 |
| ·RNA提取 | 第68-69页 |
| ·荧光定量分析 | 第69-72页 |
| ·SOD基因的生物信息学分析 | 第72-77页 |
| ·小结与讨论 | 第77-79页 |
| 结论 | 第79-83页 |
| 参考文献 | 第83-93页 |
| 攻读学位期间承担的科研任务与主要成果 | 第93-95页 |
| 致谢 | 第95-97页 |
| 个人简历 | 第97-99页 |
