| 中文摘要 | 第8-12页 |
| Abstract | 第12-15页 |
| 缩略词 | 第16-17页 |
| 第一章 文献综述 | 第17-47页 |
| 1.1 豆科模式植物蒺藜苜蓿研究进展 | 第17-23页 |
| 1.1.1 蒺藜苜蓿作为豆科模式植物的优势 | 第17-18页 |
| 1.1.2 蒺藜苜蓿Tnt1突变体库的构建 | 第18-21页 |
| 1.1.3 蒺藜苜蓿Tnt1插入突变体的筛选 | 第21-23页 |
| 1.2 顶端分生组织的维持和发育调控 | 第23-28页 |
| 1.2.1 组织中心的建成 | 第24-25页 |
| 1.2.2 干细胞命运的控制 | 第25-27页 |
| 1.2.3 干细胞增殖的平衡 | 第27-28页 |
| 1.3 植物叶片发育 | 第28-40页 |
| 1.3.1 叶原基的起始 | 第28-30页 |
| 1.3.2 叶片近-远轴极性决定因子 | 第30-33页 |
| 1.3.3 近-远轴极性基因间的拮抗 | 第33-34页 |
| 1.3.4 叶片的扩展 | 第34-39页 |
| 1.3.5 叶边缘发育 | 第39-40页 |
| 1.4 豆科植物共生结瘤调控 | 第40-44页 |
| 1.4.1 根瘤共生信号的转录级联 | 第40-42页 |
| 1.4.2 CK在共生结瘤中的作用 | 第42-44页 |
| 1.5 研究目的与意义 | 第44-47页 |
| 第二章 实验材料和方法 | 第47-59页 |
| 2.1 实验材料与药品 | 第47-48页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第47页 |
| 2.1.2 药品和试剂 | 第47-48页 |
| 2.2 实验方法 | 第48-59页 |
| 2.2.1 溶液和培养基配制 | 第48-50页 |
| 2.2.2 基因克隆和载体构建 | 第50-51页 |
| 2.2.3 质粒提取和PCR产物纯化 | 第51页 |
| 2.2.4 大肠杆菌转化 | 第51页 |
| 2.2.5 农杆菌转化 | 第51页 |
| 2.2.6 基因组DNA提取 | 第51-52页 |
| 2.2.7 RNA提取 | 第52页 |
| 2.2.8 RNA反转录和qRT-PCR | 第52页 |
| 2.2.9 扫描电镜观察 | 第52-53页 |
| 2.2.10 蒺藜苜蓿遗传转化 | 第53-54页 |
| 2.2.11 组织切片 | 第54页 |
| 2.2.12 原位杂交探针标记 | 第54-56页 |
| 2.2.13 原生质体瞬时转化 | 第56-57页 |
| 2.2.14 烟草瞬时转化 | 第57页 |
| 2.2.15 根瘤诱导 | 第57-58页 |
| 2.2.16 根瘤染色及切片分析 | 第58-59页 |
| 第三章 FCNO1在蒺藜苜蓿复叶发育中的功能研究 | 第59-83页 |
| 3.1 引言 | 第59-60页 |
| 3.2 结果分析 | 第60-80页 |
| 3.2.1 fcno1突变体花器官形态变化 | 第60-61页 |
| 3.2.2 fcno1突变体复叶形态变化 | 第61-64页 |
| 3.2.3 FCNO1是拟南芥FDH/AtKCS10的同源基因 | 第64页 |
| 3.2.4 FCNO1基因的表达模式 | 第64-66页 |
| 3.2.5 fcno1突变体缺失角质层发育缺陷 | 第66-68页 |
| 3.2.6 fcno1突变体叶片小叶增多不依赖KNOXI基因 | 第68-69页 |
| 3.2.7 fcno1突变体中生长素的含量降低 | 第69页 |
| 3.2.8 fcno1突变体中SLM1基因的表达水平和模式没有改变 | 第69-71页 |
| 3.2.9 fcno1突变体中SLM1/PIN1蛋白的极性定位发生改变 | 第71-72页 |
| 3.2.10 鉴定另一个花不能打开且叶片黏连突变体fcno2 | 第72-75页 |
| 3.2.11 反向鉴定kcs12突变体 | 第75-76页 |
| 3.2.12 FCNO1、FCNO2和MtKCS12间的遗传关系 | 第76-78页 |
| 3.2.13 FCNO1与PALM1和AGO7间的遗传关系 | 第78-80页 |
| 3.3 讨论 | 第80-83页 |
| 第四章 NS1在蒺藜苜蓿复叶发育中的功能研究 | 第83-105页 |
| 4.1 引言 | 第83-84页 |
| 4.2 结果分析 | 第84-101页 |
| 4.2.1 正向遗传学筛选获得ns1突变体 | 第84-86页 |
| 4.2.2 NS1是拟南芥WUS的同源基因 | 第86-88页 |
| 4.2.3 NS1基因表达模式分析 | 第88-89页 |
| 4.2.4 NS1编码转录抑制因子 | 第89-91页 |
| 4.2.5 NS1与MtTPL的互作依赖其WUS结构域和EAR基序 | 第91-92页 |
| 4.2.6 NS1参与蒺藜苜蓿复叶发育 | 第92-94页 |
| 4.2.7 SAM的形成和维持依赖SLM1介导的生长素分部 | 第94-97页 |
| 4.2.8 NS1的功能缺失影响叶边缘形成中的生长素响应 | 第97-101页 |
| 4.3 讨论 | 第101-105页 |
| 第五章 MtPHAN/MtA GO7在蒺藜苜蓿复叶发育中的功能研究 | 第105-123页 |
| 5.1 引言 | 第105-106页 |
| 5.2 结果分析 | 第106-120页 |
| 5.2.1 mtphan mtagO7双突变体表型分析 | 第106页 |
| 5.2.2 mtphan mtago7双突变体表型不是由MtARF3上调所致 | 第106-109页 |
| 5.2.3 KNOXI基因上调贡献mtphan mtago7双突变体表型 | 第109-110页 |
| 5.2.4 mtphan mtago7双突变体中PALM1基因的功能被抑制 | 第110-112页 |
| 5.2.5 PALM1抑制MtKNOXI基因功能 | 第112-115页 |
| 5.2.6 PALM1抑制MtKNOXI下游基因的功能 | 第115页 |
| 5.2.7 PALM1招募MtTPL/MtTPRs抑制IPT基因的表达 | 第115-120页 |
| 5.3 讨论 | 第120-123页 |
| 第六章 MtmiR319/MtTCP调控单元在根瘤发育中的功能 | 第123-137页 |
| 6.1 引言 | 第123-124页 |
| 6.2 结果分析 | 第124-133页 |
| 6.2.1 蒺藜苜蓿基因组中MtTCP基因的鉴定 | 第124-125页 |
| 6.2.2 蒺藜苜蓿TCP基因的进化分析及分类 | 第125页 |
| 6.2.3 基因结构、保守结构域及miR319识别位点分析 | 第125-128页 |
| 6.2.4 MtTCP基因的表达模式分析 | 第128-131页 |
| 6.2.5 MtmiR319/MtTCPs调控单元参与根瘤的发育 | 第131-133页 |
| 6.3 讨论 | 第133-137页 |
| 参考文献 | 第137-161页 |
| 致谢 | 第161-163页 |
| 攻读博士学位期间发表的学术论文 | 第163-164页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第164页 |
