| 摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-10页 |
| 上篇 文献综述 | 第11-32页 |
| 第一章 水稻蛋白质组学研究进展 | 第12-32页 |
| 1 水稻蛋白质组学研究的复杂性 | 第12-16页 |
| 1.1 水稻蛋白质的磷酸化 | 第15页 |
| 1.2 水稻蛋白质的泛素化 | 第15-16页 |
| 1.3 蛋白质的其他翻译后修饰 | 第16页 |
| 2 水稻蛋白质组学的研究方法 | 第16-19页 |
| 2.1 抗体及杂交技术检测蛋白质(免疫测定) | 第17页 |
| 2.2 高通量蛋白质组学技术 | 第17-19页 |
| 2.2.1 质谱分析及蛋白质谱 | 第17-18页 |
| 2.2.2 蛋白质芯片(蛋白质微阵列) | 第18-19页 |
| 3 水稻受生物胁迫蛋白质组学 | 第19-24页 |
| 3.1 水稻植物-病原物互作和分泌组学 | 第21-23页 |
| 3.1.1 稻瘟病和分泌组学 | 第21-22页 |
| 3.1.2 水稻白叶枯病和分泌组学 | 第22-23页 |
| 3.2 响应生物胁迫蛋白质的功能分析 | 第23-24页 |
| 4 水稻蛋白质组学的总结与展望 | 第24-25页 |
| 参考文献 | 第25-32页 |
| 下篇 研究内容 | 第32-76页 |
| 第二章 稻瘟病菌侵染过程中水稻蛋白质组学分析 | 第34-54页 |
| 1 材料与方法 | 第36-38页 |
| 1.1 供试菌株与寄主植物 | 第36页 |
| 1.2 培养基的制备 | 第36页 |
| 1.3 稻瘟病菌侵染水稻及水稻蛋白质样品准备 | 第36-37页 |
| 1.3.1 稻瘟病菌侵染水稻 | 第36-37页 |
| 1.3.2 水稻蛋白质样品制备 | 第37页 |
| 1.4 高通量蛋白质组测序 | 第37-38页 |
| 1.4.1 iTRAQ | 第37-38页 |
| 1.4.2 二甲基同位素标记法 | 第38页 |
| 2 结果与分析 | 第38-49页 |
| 2.1 ITRAQ所得蛋白质数据分析 | 第38-44页 |
| 2.1.1 水稻经Guy11及2539侵染后,表达均上调的蛋白质GO分析 | 第39-40页 |
| 2.1.2 水稻经Guy11及2539侵染后,表达均下调的蛋白质GO分析 | 第40-41页 |
| 2.1.3 水稻经Guy11及2539侵染后,Guy11诱导蛋白质GO分析 | 第41-42页 |
| 2.1.4 水稻经Guy11及2539侵染后,Guy11抑制蛋白质GO分析 | 第42-44页 |
| 2.2 二甲基同位素标记法所得蛋白质数据分析 | 第44-49页 |
| 3 讨论 | 第49-52页 |
| 参考文献 | 第52-54页 |
| 第三章 OSGLO1在水稻对稻瘟病抗性中的作用研究 | 第54-76页 |
| 1 材料与方法 | 第56-63页 |
| 1.1 OsGLO1过表达载体构建 | 第56-59页 |
| 1.1.1 OsGLO1基因片段获得 | 第56页 |
| 1.1.2 过表达载体构建 | 第56-57页 |
| 1.1.3 沉默载体构建 | 第57-59页 |
| 1.2 水稻原生质体的提取及转化 | 第59-60页 |
| 1.3 稻瘟病菌激发子的提取 | 第60页 |
| 1.4 水稻原生质体胼胝质含量测定 | 第60-61页 |
| 1.5 水稻原生质体活性氧含量测定 | 第61页 |
| 1.6 水稻原生质体转化后RNA的提取及反转录 | 第61页 |
| 1.6.1 水稻原生质体转化后RNA的提取 | 第61页 |
| 1.6.2 反转录 | 第61页 |
| 1.7 水稻抗病相关基因的定量检测 | 第61-63页 |
| 2 结果与分析 | 第63-72页 |
| 2.1 水稻原生质体及稻瘟病菌激发子互作系统简介 | 第63-65页 |
| 2.2 OsGLO1过表达及沉默载体的验证 | 第65-66页 |
| 2.3 OsGLO1过表达及沉默后活性氧积累量检测 | 第66-67页 |
| 2.4 OsGLO1过表达及沉默后胼胝质沉积量检测 | 第67-68页 |
| 2.5 OsGLO1过表达及沉默后水稻抗病相关基因表达量检测 | 第68-72页 |
| 3 讨论 | 第72-74页 |
| 参考文献 | 第74-76页 |
| 全文总结 | 第76-78页 |
| 附录1 | 第78-88页 |
| 附录2 | 第88-90页 |
| 攻读硕士学位期间发表的研究论文 | 第90-92页 |
| 致谢 | 第92页 |
