| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-8页 |
| 第一章 前言 | 第11-17页 |
| 1.1 背景 | 第11页 |
| 1.2 抗肿瘤活性金属配合物 | 第11-13页 |
| 1.3 脂质体 | 第13-15页 |
| 1.3.1 普通脂质体 | 第13页 |
| 1.3.2 新型脂质体 | 第13-15页 |
| 1.4 选题意义与研究内容 | 第15-17页 |
| 第二章 铱(Ⅲ)配合物处方前研究 | 第17-27页 |
| 2.1 试药与仪器 | 第17-18页 |
| 2.1.1 试药 | 第17页 |
| 2.1.2 仪器 | 第17-18页 |
| 2.2 实验方法与结果 | 第18-24页 |
| 2.2.1 脂质体含量测定方法的建立 | 第18-22页 |
| 2.2.2 平衡溶解度的测定 | 第22页 |
| 2.2.3 脂质体包封率和载药量测定方法的建立 | 第22-24页 |
| 2.3 讨论 | 第24-25页 |
| 2.4 本章小结 | 第25-27页 |
| 第三章 铱(Ⅲ)配合物长循环脂质体的制备及理化性质的研究 | 第27-41页 |
| 3.1 试药与仪器 | 第27页 |
| 3.1.1 试药 | 第27页 |
| 3.1.2 仪器 | 第27页 |
| 3.2 实验方法与结果 | 第27-39页 |
| 3.2.1 制备方法的考察 | 第27-28页 |
| 3.2.2 单因素试验筛选处方 | 第28-30页 |
| 3.2.3 制备工艺的考察 | 第30-31页 |
| 3.2.4 星点设计-效应面法优化处方 | 第31-36页 |
| 3.2.5 铱(Ⅲ)配合物长循环脂质体理化性质的研究 | 第36-39页 |
| 3.3 讨论 | 第39页 |
| 3.4 本章小结 | 第39-41页 |
| 第四章 铱(Ⅲ)配合物长循环冻干脂质体的制备及理化性质的研究 | 第41-55页 |
| 4.1 试药与仪器 | 第41-42页 |
| 4.1.1 试药 | 第41页 |
| 4.1.2 仪器 | 第41-42页 |
| 4.2 实验方法与结果 | 第42-53页 |
| 4.2.1 冻干脂质体的制备 | 第42页 |
| 4.2.2 冷冻干燥工艺的考察 | 第42-45页 |
| 4.2.3 脂质体的理化性质对冻干的影响 | 第45-46页 |
| 4.2.4 冷冻后脂质体水化方法的考察 | 第46-47页 |
| 4.2.5 冷冻干燥处方的筛选 | 第47-49页 |
| 4.2.6 铱(Ⅲ)配合物长循环冻干脂质体理化性质的研究 | 第49-53页 |
| 4.3 讨论 | 第53-54页 |
| 4.4 本章小结 | 第54-55页 |
| 第五章 铱(Ⅲ)配合物长循环脂质体体外抗肿瘤活性的研究 | 第55-67页 |
| 5.1 试药与仪器 | 第55-56页 |
| 5.1.1 试药 | 第55页 |
| 5.1.2 仪器 | 第55-56页 |
| 5.2 实验方法与结果 | 第56-65页 |
| 5.2.1 溶液的配制 | 第56页 |
| 5.2.2 细胞及培养 | 第56页 |
| 5.2.3 细胞毒性试验 | 第56-58页 |
| 5.2.4 细胞凋亡形态检测 | 第58-59页 |
| 5.2.5 细胞摄取 | 第59页 |
| 5.2.6 细胞内定位 | 第59-61页 |
| 5.2.7 JC-1染色检测线粒体膜电位 | 第61-62页 |
| 5.2.8 DCFH-DA荧光探针检测细胞内ROS水平 | 第62-63页 |
| 5.2.9 Fluo-3AM荧光探针检测细胞内Ca2+浓度 | 第63-64页 |
| 5.2.10 流式细胞仪检测细胞周期 | 第64-65页 |
| 5.3 讨论 | 第65-66页 |
| 5.4 本章小结 | 第66-67页 |
| 第六章 结论与展望 | 第67-69页 |
| 6.1 结论 | 第67页 |
| 6.2 展望 | 第67-69页 |
| 参考文献 | 第69-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第75页 |
