| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 前言 | 第11-23页 |
| 1.1 水稻突变体与功能基因组学 | 第11-13页 |
| 1.1.1 自然突变 | 第11页 |
| 1.1.2 人工诱变 | 第11-12页 |
| 1.1.3 插入突变 | 第12-13页 |
| 1.2 水稻茎秆生长伸长与植物激素 | 第13-18页 |
| 1.2.1 影响水稻茎秆伸长的激素种类 | 第13-16页 |
| 1.2.2 植物激素调控的分子机理 | 第16-18页 |
| 1.3 CRISPR/Cas9基因编辑技术及应用 | 第18-19页 |
| 1.3.1 CRISPR/Cas9基因编辑技术 | 第18页 |
| 1.3.2 CRISPR/Cas9基因编辑技术应用及前景 | 第18-19页 |
| 1.4 植物锌指蛋白概况 | 第19-21页 |
| 1.4.1 锌指蛋白在植物中的功能 | 第19-20页 |
| 1.4.2 水稻锌指蛋白研究概况 | 第20-21页 |
| 1.5 水稻包穗研究进展 | 第21-23页 |
| 第二章 包穗候选基因shpx的确定 | 第23-28页 |
| 2.1 材料与方法 | 第23-25页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第23-24页 |
| 2.1.2 试验方法 | 第24-25页 |
| 2.2 结果与分析 | 第25-27页 |
| 2.2.1 T893与M893DNA样品鉴定结果与分析 | 第25-26页 |
| 2.2.2 T893与M893基因组重测序的比对结果分析 | 第26页 |
| 2.2.3 候选基因shpx的PCR测序结果验证分析 | 第26-27页 |
| 2.3 讨论 | 第27-28页 |
| 第三章 包穗候选基因shpx的生物信息学分析 | 第28-32页 |
| 3.1 材料与方法 | 第28页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第28页 |
| 3.1.2 试验方法 | 第28页 |
| 3.2 结果与分析 | 第28-31页 |
| 3.2.1 shpx基因序列及结构分析 | 第28-29页 |
| 3.2.2 shpx基因在水稻中时空表达结果分析 | 第29-30页 |
| 3.2.3 shpx蛋白序列比对分析与进化树的构建 | 第30-31页 |
| 3.3 讨论 | 第31-32页 |
| 第四章 包穗候选基因shpx在水稻不同组织的表达分析 | 第32-36页 |
| 4.1 材料与方法 | 第32-34页 |
| 4.1.1 试验材料 | 第32页 |
| 4.1.2 试验方法 | 第32-34页 |
| 4.2 结果与分析 | 第34-35页 |
| 4.2.1 水稻各组织RNA样品鉴定 | 第34页 |
| 4.2.2 Shpx在水稻组织的特异性表达分析 | 第34-35页 |
| 4.3 讨论 | 第35-36页 |
| 第五章 包穗候选基因shpx载体的构建及转基因植株的获得 | 第36-52页 |
| 5.1 材料与方法 | 第36-45页 |
| 5.1.1 试验材料 | 第36页 |
| 5.1.2 试验方法 | 第36-45页 |
| 5.2 结果与分析 | 第45-51页 |
| 5.2.1 shpx亚细胞定位载体构建及转化水稻原生质体的定位分析 | 第45-46页 |
| 5.2.2 shpx过表达载体构建及转基因植株的获得 | 第46-49页 |
| 5.2.3 pYLCRISPR/Cas9-shpx基因编辑载体构建及转基因苗获得 | 第49-51页 |
| 5.3 讨论 | 第51-52页 |
| 第六章 水稻锌指蛋白基因OsBBX24响应热胁迫的研究 | 第52-60页 |
| 6.1 材料与方法 | 第52-54页 |
| 6.1.1 试验材料 | 第52页 |
| 6.1.2 试验方法 | 第52-54页 |
| 6.2 结果与分析 | 第54-58页 |
| 6.2.1 OsBBX24蛋白同源比对结果 | 第54-55页 |
| 6.2.2 OsBBX24基因在野生型和OsBBX24-RNAi转基因水稻株系中的表达分析 | 第55页 |
| 6.2.3 OsBBX24-RNAi水稻和野生型Kitaake耐热表型分析 | 第55-56页 |
| 6.2.4 热胁迫后生理生化指标分析 | 第56-57页 |
| 6.2.5 热激蛋白Hsps及热激转录因子Hsf基因响应热胁迫表达的荧光定量分析 | 第57-58页 |
| 6.3 讨论 | 第58-60页 |
| 参考文献 | 第60-70页 |
| 附录 | 第70-71页 |
| 致谢 | 第71-72页 |
| 作者简介 | 第72页 |
