摘要 | 第6-7页 |
abstract | 第7页 |
英文缩略表 | 第11-12页 |
第一章 引言 | 第12-21页 |
1.1 植物种子大小/重量的重要性 | 第12页 |
1.2 植物种子大小/重量的复杂性 | 第12-13页 |
1.3 已知的植物种子大小/重量基因及其调控途径 | 第13-18页 |
1.3.1 泛素-蛋白酶体降解途径 | 第14-15页 |
1.3.2 植物激素途径 | 第15-16页 |
1.3.3 G蛋白信号途径 | 第16页 |
1.3.4 CYP450途径 | 第16-17页 |
1.3.5 转录因子途径 | 第17-18页 |
1.3.6 IKU途径 | 第18页 |
1.4 油菜粒重的遗传学研究进展 | 第18-19页 |
1.4.1 传统数量遗传学 | 第18页 |
1.4.2 QTL定位 | 第18-19页 |
1.4.3 基因克隆 | 第19页 |
1.5 本研究的目的和意义 | 第19-21页 |
第二章 材料与方法 | 第21-32页 |
2.1 生物信息学分析 | 第21页 |
2.2 超表达载体构建 | 第21-26页 |
2.2.1 实验材料 | 第21页 |
2.2.2 RNA提取和反转录cDNA | 第21-22页 |
2.2.3 PCR扩增和切胶回收 | 第22-23页 |
2.2.4 与pMD18T的连接与转化 | 第23-24页 |
2.2.5 超表达载体的构建 | 第24页 |
2.2.6 双酶切反应 | 第24-25页 |
2.2.7 连接与转化 | 第25页 |
2.2.8 质粒提取 | 第25-26页 |
2.3 拟南芥遗传转化 | 第26页 |
2.3.1 农杆菌转化(热激法) | 第26页 |
2.3.2 拟南芥浸染(花序侵染法) | 第26页 |
2.4 转基因株系的筛选与鉴定 | 第26-27页 |
2.4.1 实验试剂 | 第26-27页 |
2.4.2 转基因株系的筛选 | 第27页 |
2.4.3 转基因株系的鉴定 | 第27页 |
2.5 种子的细胞学观察 | 第27-28页 |
2.5.1 实验材料 | 第27页 |
2.5.2 实验仪器与试剂 | 第27页 |
2.5.3 试验方法 | 第27-28页 |
2.6 启动子分析载体的构建 | 第28-29页 |
2.6.1 实验材料 | 第28页 |
2.6.2 DNA提取 | 第28页 |
2.6.3 PCR扩增与切胶回收 | 第28页 |
2.6.4 与pMD18-T的连接与转化 | 第28页 |
2.6.5 双酶切反应 | 第28-29页 |
2.6.6 连接与转化 | 第29页 |
2.7 转基因拟南芥的GUS组织化学染色 | 第29-30页 |
2.7.1 GUS染色所需的主要试剂 | 第29页 |
2.7.2 GUS组织化学染色 | 第29-30页 |
2.8 亚细胞定位 | 第30页 |
2.8.1 激活缓冲液的配制方法 | 第30页 |
2.8.2 农杆菌侵染液的准备 | 第30页 |
2.8.3 烟草侵染 | 第30页 |
2.9 拟南芥种子转录组测序 | 第30-32页 |
2.9.1 实验材料 | 第30页 |
2.9.2 RNA提取 | 第30-31页 |
2.9.3 转录组测序文库构建与测序 | 第31-32页 |
第三章 结果与分析 | 第32-43页 |
3.1 BnC08.JAZ1-1基因的生物信息学分析 | 第32-35页 |
3.1.1 BnC08.JAZ1-1蛋白的理化性质分析 | 第32页 |
3.1.2 BnC08.JAZ1-1蛋白的结构特征分析 | 第32-34页 |
3.1.3 BnC08.JAZ1-1蛋白的系统进化分析 | 第34-35页 |
3.2 BnC08.JAZ1-1超表达株系种子的细胞学观察 | 第35-36页 |
3.3 BnC08.JAZ1-1基因的时空表达模式 | 第36-38页 |
3.3.1 BnC08.JAZ1-1基因启动子载体构建 | 第36-37页 |
3.3.2 BnC08.JAZ1-1的GUS组织化学定位 | 第37-38页 |
3.4 BnC08.JAZ1-1的亚细胞定位 | 第38-39页 |
3.5 BnC08.JAZ1-1超表达拟南芥株系种子的转录组分析 | 第39-43页 |
第四章 讨论与小结 | 第43-44页 |
参考文献 | 第44-50页 |
附录 | 第50-66页 |
致谢 | 第66-67页 |
作者简历 | 第67页 |