| 中文摘要 | 第8-10页 |
| SUMMARY | 第10-11页 |
| 缩略词表 | 第12-13页 |
| 第一章 前言 | 第13-25页 |
| 1 不同产地板蓝根药材品质考察的研究进展 | 第13-17页 |
| 1.1 以表告依春含量为考察指标 | 第13-14页 |
| 1.2 以靛蓝和靛红玉含量为考察指标 | 第14页 |
| 1.3 以腺苷含量为考察指标 | 第14页 |
| 1.4 以氨基酸含量为考察指标 | 第14-15页 |
| 1.5 以有机酸含量为考察指标 | 第15-16页 |
| 1.6 以多糖为考察指标 | 第16页 |
| 1.7 其它考察指标 | 第16-17页 |
| 2 板蓝根多糖理化性质的研究进展 | 第17-18页 |
| 3 板蓝根多糖药理活性的研究进展 | 第18-20页 |
| 3.1 抗肿瘤活性 | 第18页 |
| 3.2 抗氧化活性 | 第18页 |
| 3.3 抗病毒活性 | 第18-19页 |
| 3.4 疫苗佐剂活性 | 第19-20页 |
| 3.4.1 与鸡新城疫苗联用 | 第19页 |
| 3.4.2 与PRRSV弱毒苗联用 | 第19-20页 |
| 4 多糖佐剂作用机理的研究进展 | 第20-24页 |
| 4.1 非多糖佐剂的作用机理 | 第20-22页 |
| 4.2 多糖佐剂的作用机理 | 第22-23页 |
| 4.2.1 对抗原呈递细胞的影响 | 第22页 |
| 4.2.2 对细胞因子与获得性免疫应答类型的影响 | 第22-23页 |
| 4.2.3 对巨噬细胞的影响 | 第23页 |
| 4.3 结语 | 第23-24页 |
| 5 本论文的研究内容及意义 | 第24-25页 |
| 第二章 不同产地板蓝根活性多糖考察 | 第25-39页 |
| 1 材料 | 第25-26页 |
| 1.1 药材 | 第25页 |
| 1.2 仪器 | 第25-26页 |
| 1.3 试剂 | 第26页 |
| 2 实验方法 | 第26-31页 |
| 2.1 板蓝根总多糖的制备 | 第26-27页 |
| 2.2 糖含量测定 | 第27-28页 |
| 2.2.1 标准曲线的制作 | 第27-28页 |
| 2.2.2 样品糖含量测定 | 第28页 |
| 2.3 糖醛酸含量测定 | 第28-29页 |
| 2.3.1 标准曲线的制作 | 第28-29页 |
| 2.3.2 样品糖醛酸含量测定 | 第29页 |
| 2.4 总多糖峰位分子量分布测定（HPGPC） | 第29-30页 |
| 2.4.1 色谱条件 | 第29页 |
| 2.4.2 标准曲线制作 | 第29-30页 |
| 2.4.3 样品峰位分子量分布测定 | 第30页 |
| 2.5 单糖组成分析 | 第30-31页 |
| 2.5.1 PMP衍生化反应原理 | 第30页 |
| 2.5.2 操作步骤 | 第30-31页 |
| 2.5.3 毛细管电泳条件 | 第31页 |
| 2.5.4 单糖摩尔比的计算方法 | 第31页 |
| 3.实验结果 | 第31-37页 |
| 3.1 不同产地板蓝根总多糖得率 | 第31-32页 |
| 3.2 不同产地板蓝根总多糖的糖含量、糖醛酸含量 | 第32页 |
| 3.3 不同产地板蓝根总多糖峰位分子量测定 | 第32-34页 |
| 3.4 不同产地板蓝根总多糖单糖组成 | 第34-37页 |
| 3.4.1 标准单糖PMP衍生物CE分离鉴定结果 | 第34-35页 |
| 3.4.2 不同产地板蓝根总多糖单糖组成分析结果 | 第35-37页 |
| 4 讨论 | 第37-39页 |
| 第三章 100℃提取板蓝根多糖化学组分的研究 | 第39-50页 |
| 1 材料 | 第39-40页 |
| 1.1 药材 | 第39页 |
| 1.2 仪器 | 第39页 |
| 1.3 试剂 | 第39-40页 |
| 2 实验方法 | 第40-45页 |
| 2.1100℃板蓝根总多糖的制备 | 第40-41页 |
| 2.2 总多糖IIP-100的分离 | 第41页 |
| 2.3 糖含量测定 | 第41-42页 |
| 2.3.1 标准曲线的制作 | 第41-42页 |
| 2.3.2 样品糖含量的测定 | 第42页 |
| 2.4 糖醛酸含量测定 | 第42-43页 |
| 2.4.1 标准曲线的制作 | 第42-43页 |
| 2.4.2 样品糖醛酸含量的测定 | 第43页 |
| 2.5 分子量分布测定（HPGPC） | 第43-44页 |
| 2.5.1 色谱条件： | 第43-44页 |
| 2.5.2 标准曲线制作 | 第44页 |
| 2.5.3 样品峰位分子量测定 | 第44页 |
| 2.6 单糖组成分析 | 第44-45页 |
| 2.6.1 PMP衍生化反应原理 | 第44页 |
| 2.6.2 操作步骤 | 第44-45页 |
| 2.6.3 毛细管电泳条件 | 第45页 |
| 2.6.4 单糖摩尔比的计算方法 | 第45页 |
| 3 实验结果 | 第45-49页 |
| 3.1 总多糖IIP-100及其组分的得率 | 第45-46页 |
| 3.3 IIP100A、IIP100B、IIP100C的糖含量、糖醛酸含量 | 第46页 |
| 3.4 IIP100A、IIP100B、IIP100C峰位分子量的测定 | 第46-47页 |
| 3.5 IIP100A、IIP100B、IIP100C单糖组成 | 第47-49页 |
| 3.5.1 标准单糖PMP衍生物CE分离鉴定结果 | 第47-48页 |
| 3.5.2 IIP100A、IIP100B、IIP100C单糖组成分析结果 | 第48-49页 |
| 4 讨论 | 第49-50页 |
| 第四章 总多糖IIP-100及其组分佐剂活性评价 | 第50-60页 |
| 1 材料 | 第50-51页 |
| 1.1 供试品与试剂 | 第50页 |
| 1.2 仪器 | 第50-51页 |
| 1.3 动物 | 第51页 |
| 1.4 溶液配制 | 第51页 |
| 2 实验方法 | 第51-54页 |
| 2.1 乙肝抗原（HBSAG）免疫方案 | 第51-52页 |
| 2.2 ELISA法检测免疫小鼠血清中抗体滴度 | 第52页 |
| 2.3 ELISA法检测血清中亚类抗体的滴度 | 第52-53页 |
| 2.4 流式细胞仪检测小鼠脾淋巴细胞及其亚群 | 第53-54页 |
| 2.5 统计学分析 | 第54页 |
| 3 实验结果 | 第54-58页 |
| 3.1 总多糖IIP-100及其组分对HBSAG疫苗免疫小鼠血清抗体滴度的影响 | 第54-55页 |
| 3.2 总多糖IIP-100及其组分对HBSAG疫苗免疫小鼠血清抗体亚类的影响 | 第55-57页 |
| 3.3 总多糖IIP-100及其组分对HBSAG疫苗免疫小鼠脾淋巴细胞及亚群的影响 | 第57-58页 |
| 4 讨论 | 第58-60页 |
| 第五章 IIP-A-1 佐剂作用机理的研究 | 第60-75页 |
| 1 材料 | 第60-62页 |
| 1.1 供试品与试剂 | 第60页 |
| 1.2 仪器 | 第60-61页 |
| 1.3 动物与细胞株 | 第61页 |
| 1.4 溶液配制 | 第61-62页 |
| 2 实验方法 | 第62-66页 |
| 2.1 免疫方案 | 第62页 |
| 2.1.1 抗体产生时-效关系免疫方案 | 第62页 |
| 2.1.2 细胞免疫功能影响免疫方案 | 第62页 |
| 2.2 ELISA法检测受免小鼠血清中抗体滴度 | 第62-63页 |
| 2.3 ELISA法检测血清中亚类抗体的滴度 | 第63页 |
| 2.4 MTT法检测T、B淋巴细胞的增殖活性 | 第63-64页 |
| 2.5 流式细胞仪检测小鼠脾淋巴细胞及其亚群 | 第64页 |
| 2.6 细胞因子IFN-Γ 和IL-4 的诱导及检测 | 第64-65页 |
| 2.7 IIP-A-1 对小鼠脾细胞增殖活性与IL-12分泌的影响 | 第65页 |
| 2.8 IIP-A-1 对MH-S细胞株增殖活性与TNF-A分泌的影响 | 第65-66页 |
| 2.9 统计学分析 | 第66页 |
| 3 实验结果 | 第66-74页 |
| 3.1 IIP-A-1 对H1N1疫苗免疫小鼠血清抗体滴度影响 | 第66-67页 |
| 3.2 IIP-A-1 对H1N1疫苗免疫小鼠血清亚类抗体滴度的影响 | 第67-71页 |
| 3.3 IIP-A-1 对H1N1疫苗免疫小鼠T、B淋巴细胞增殖活性的影响 | 第71页 |
| 3.4 IIP-A-1 对H1N1疫苗免疫小鼠脾淋巴细胞及亚群的影响 | 第71-72页 |
| 3.5 IIP-A-1 对H1N1免疫小鼠脾、胸腺IFN-Γ 和IL-4 诱导水平的影响 | 第72-73页 |
| 3.6 IIP-A-1 对小鼠脾细胞增殖活性及IL-12分泌的影响 | 第73页 |
| 3.7 IIP-A-1 对MH-S细胞增殖活性与TNF-Α 分泌的影响 | 第73-74页 |
| 4 讨论 | 第74-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 参考文献 | 第76-82页 |
| 附录 | 第82-83页 |
