| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-28页 |
| 1.1 望春玉兰概述 | 第11-12页 |
| 1.1.1 形态学特征 | 第11-12页 |
| 1.1.2 生物学特征 | 第12页 |
| 1.1.3 生长分布区 | 第12页 |
| 1.2 木兰科植物研究进展 | 第12-17页 |
| 1.2.1 辛夷、木兰实名新考及玉兰花文化研究 | 第12-13页 |
| 1.2.2 木兰科植物研究进展 | 第13-17页 |
| 1.3 遗传多样性研究概述及在木兰属中的应用 | 第17-23页 |
| 1.3.1 遗传多样性的概念 | 第17-18页 |
| 1.3.2 研究遗传多样性的意义 | 第18页 |
| 1.3.3 遗传多样性的研究方法及在木兰科植物中的应用 | 第18-23页 |
| 1.4 分子标记法在木兰科植物中的应用研究 | 第23-26页 |
| 1.4.1 系统进化及分类学研究 | 第23-24页 |
| 1.4.2 遗传多样性研究 | 第24-25页 |
| 1.4.3 指纹图谱研究 | 第25页 |
| 1.4.4 亲缘关系分析研究 | 第25-26页 |
| 1.5 本研究的目的意义及技术路线 | 第26-28页 |
| 1.5.1 目的意义 | 第26-27页 |
| 1.5.2 本研究的技术路线 | 第27-28页 |
| 第二章 望春玉兰遗传多样性的 ISSR 分析 | 第28-40页 |
| 2.1 供试野生望春玉兰样本收集 | 第28-29页 |
| 2.1.1 采样地点 | 第28页 |
| 2.1.2 调查路线 | 第28-29页 |
| 2.1.3 望春玉兰花形态变异 | 第29页 |
| 2.2 望春玉兰种质遗传多样性分析 | 第29-40页 |
| 2.2.1 试验材料 | 第29页 |
| 2.2.2 主要仪器及试剂 | 第29-35页 |
| 2.2.3 试验步骤 | 第35-38页 |
| 2.2.4 数据处理与分析 | 第38-40页 |
| 第三章 结果与分析 | 第40-57页 |
| 3.1 望春玉兰基因组 DNA 的提取与检测 | 第40-43页 |
| 3.1.1 DNA 提取方法比较 | 第40-41页 |
| 3.1.2 不同植物器官 DNA 提取比较 | 第41-43页 |
| 3.2 望春玉兰 ISSR-PCR 反应体系的建立与优化 | 第43-46页 |
| 3.2.1 模板浓度对 ISSR-PCR 扩增结果的影响 | 第44页 |
| 3.2.2 引物浓度对 ISSR-PCR 扩增结果的影响 | 第44-45页 |
| 3.2.3 循环次数对 ISSR-PCR 扩增结果的影响 | 第45页 |
| 3.2.4 延伸时间对 ISSR-PCR 扩增结果的影响 | 第45-46页 |
| 3.2.5 ISSR-PCR 反应体系和扩增程序的建立 | 第46页 |
| 3.3 ISSR 引物的筛选及最佳退火温度的确定 | 第46-48页 |
| 3.3.1 ISSR 引物的筛选 | 第46-47页 |
| 3.3.2 引物退火温度的筛选 | 第47-48页 |
| 3.4 望春玉兰种质 ISSR-PCR 最优体系结果验证 | 第48-49页 |
| 3.5 望春玉兰遗传多样性及亲缘关系的 ISSR 分析 | 第49-57页 |
| 3.5.1 望春玉兰遗传多样性分析 | 第49-51页 |
| 3.5.2 望春玉兰遗传关系分析 | 第51-57页 |
| 第四章 讨论 | 第57-66页 |
| 4.1 望春玉兰基因组 DNA 的提取 | 第57-58页 |
| 4.2 体系优化对望春玉兰 ISSR—PCR 体系的影响 | 第58-61页 |
| 4.2.1 DNA 模板对 ISSR—PCR 扩增的影响 | 第59页 |
| 4.2.2 引物浓度对 ISSR—PCR 扩增的影响 | 第59-60页 |
| 4.2.3 退火温度对 ISSR—PCR 扩增的影响 | 第60页 |
| 4.2.4 循环次数和延伸时间对 ISSR—PCR 扩增的影响 | 第60页 |
| 4.2.5 其它因素对 ISSR—PCR 扩增的影响 | 第60-61页 |
| 4.3 望春玉兰的遗传多样性 | 第61-63页 |
| 4.4 望春玉兰的遗传分化 | 第63-64页 |
| 4.5 基于亲缘关系的聚类分析 | 第64页 |
| 4.6 野生望春玉兰资源的保护建议 | 第64-66页 |
| 参考文献 | 第66-71页 |
| 致谢 | 第71-72页 |
| 作者简介 | 第72页 |
