| 摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-24页 |
| 1.1 大菱鲆（Scophthalmus maximus） | 第15页 |
| 1.2 鱼类的免疫器官 | 第15-16页 |
| 1.2.1 胸腺 | 第15页 |
| 1.2.2 头肾 | 第15-16页 |
| 1.2.3 脾 | 第16页 |
| 1.2.4 黏膜相关淋巴组织(MALT) | 第16页 |
| 1.3 鱼类的免疫应答 | 第16-17页 |
| 1.4 非特异性免疫相关指标 | 第17-18页 |
| 1.4.1 溶菌酶 | 第17页 |
| 1.4.2 碱性磷酸酶 | 第17页 |
| 1.4.3 吞噬作用 | 第17-18页 |
| 1.4.4 补体 | 第18页 |
| 1.5 特异性免疫相关细胞因子 | 第18-20页 |
| 1.5.1 主要组织相容性复合体(MHC) | 第18-19页 |
| 1.5.2 白介素 1（IL-1） | 第19页 |
| 1.5.3 TNF-α | 第19-20页 |
| 1.6 鱼类疫苗 | 第20页 |
| 1.7 免疫佐剂 | 第20-22页 |
| 1.7.1 佐剂的作用原理 | 第20-21页 |
| 1.7.2 免疫佐剂的分类 | 第21-22页 |
| 1.7.3 影响佐剂效果的的因素 | 第22页 |
| 1.8 皂角苷 | 第22-24页 |
| 第二章 皂角苷对大菱鲆重要免疫基因表达的影响 | 第24-45页 |
| 2.1 前言 | 第24页 |
| 2.2 材料方法 | 第24-28页 |
| 2.2.1 大菱鲆和皂角苷 | 第24页 |
| 2.2.2 鳗弧菌疫苗制备 | 第24页 |
| 2.2.3 分组、免疫和取样 | 第24-26页 |
| 2.2.4 RNA 提取和 cDNA 的合成 | 第26-27页 |
| 2.2.5 qPCR 检测各个基因的表达 | 第27-28页 |
| 2.2.6 数据分析 | 第28页 |
| 2.3 结果 | 第28-43页 |
| 2.3.1 总 RNA 提取及检测 | 第28-29页 |
| 2.3.2 大菱鲆β-actin 基因、MHCⅡα基因、IL-1β基因、TNF-α基因Real-TimePCR 中溶解曲线分析 | 第29-30页 |
| 2.3.3 MHCⅡα基因在各个组织中的表达 | 第30-34页 |
| 2.3.4 IL-1β基因的表达分析 | 第34-38页 |
| 2.3.5 TNF-α在组织中的表达 | 第38-42页 |
| 2.3.6 大菱鲆不同部位的皮肤中三种基因表达分析 | 第42-43页 |
| 2.4 讨论 | 第43-45页 |
| 第三章 皂角苷对大菱鲆非特异性免疫的影响 | 第45-57页 |
| 3.1 前言 | 第45页 |
| 3.2 材料与方法 | 第45-49页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第45页 |
| 3.2.2 实验分组 | 第45页 |
| 3.2.3 样品的提取和制备 | 第45-46页 |
| 3.2.4 白细胞吞噬活力 | 第46-47页 |
| 3.2.5 补体旁路途径溶血活性（ACH50） | 第47页 |
| 3.2.6 溶菌酶活力 | 第47-48页 |
| 3.2.7 抑菌活力测定 | 第48页 |
| 3.2.8 AKP 活力 | 第48页 |
| 3.2.9 血清总蛋白浓度的测定 | 第48页 |
| 3.2.10 数据分析 | 第48-49页 |
| 3.3 结果 | 第49-55页 |
| 3.3.1 皂角苷对白细胞吞噬活力的影响 | 第49-50页 |
| 3.3.2 血清补体旁路途径溶血活性 | 第50-51页 |
| 3.3.3 血清及黏液中溶菌酶活力 | 第51页 |
| 3.3.4 抑菌活力测定 | 第51-53页 |
| 3.3.5 AKP 活力 | 第53-54页 |
| 3.3.6 血清总蛋白含量 | 第54-55页 |
| 3.4 讨论 | 第55-57页 |
| 参考文献 | 第57-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 个人简历 | 第67页 |
| 攻读学位期间科研成果 | 第67-68页 |
