| 摘要 | 第4-8页 |
| Abstract | 第8-12页 |
| 英文缩略语 | 第13-19页 |
| 第一部分 ：百草枯对U118星形胶质瘤细胞的毒性作用研究 | 第19-38页 |
| 1 前言 | 第19-21页 |
| 2 材料与方法 | 第21-26页 |
| 2.1 实验材料 | 第21-22页 |
| 2.1.1 实验样品 | 第21页 |
| 2.1.2 主要试剂与耗材 | 第21-22页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-26页 |
| 2.2.1 细胞培养 | 第22页 |
| 2.2.2 细胞存活率检测与形态学观察 | 第22-23页 |
| 2.2.3 细胞凋亡检测 | 第23-24页 |
| 2.2.4 细胞反应性激活的检测 | 第24页 |
| 2.2.5 细胞周期的检测 | 第24页 |
| 2.2.6 星形胶质细胞特征性因子mRNA表达水平检测 | 第24-26页 |
| 3 结果 | 第26-33页 |
| 3.1 PQ 诱导细胞生存率和形态变化 | 第26-27页 |
| 3.1.1 百草枯诱导细胞生存率降低 | 第26-27页 |
| 3.1.2 PQ 诱导 U118 细胞形态改变 | 第27页 |
| 3.2 PQ诱导U118细胞发生迟发性凋亡 | 第27-30页 |
| 3.2.1 PQ诱导细胞内pro-Casp-3表达降低及PARP片段切割 | 第28页 |
| 3.2.2 PQ诱导细胞AnnexinV/PI染色变化 | 第28-30页 |
| 3.3 PQ诱导U118细胞发生反应性激活 | 第30-31页 |
| 3.4 PQ诱导U118细胞S期周期阻滞 | 第31-32页 |
| 3.5 PQ诱导U118细胞星形胶质细胞特征性因子mRNA表达水平变化 | 第32-33页 |
| 4 讨论 | 第33-37页 |
| 4.1 PQ诱导U118细胞发生迟发性凋亡 | 第33-34页 |
| 4.2 PQ刺激U118细胞反应性激活 | 第34-35页 |
| 4.3 PQ诱导U118细胞星形胶质细胞特征性因子表达变化及细胞周期变化 | 第35-37页 |
| 5 结论 | 第37-38页 |
| 第二部分 ：百草枯诱导的U118细胞反应性激活中分泌粒蛋白II表达变化研究 | 第38-54页 |
| 6 前言 | 第38-39页 |
| 7 材料与方法 | 第39-44页 |
| 7.1 实验材料 | 第39-41页 |
| 7.1.1 实验样品 | 第39页 |
| 7.1.2 主要试剂与耗材 | 第39-40页 |
| 7.1.3 主要仪器 | 第40-41页 |
| 7.2 实验方法 | 第41-44页 |
| 7.2.1 细胞培养 | 第41页 |
| 7.2.2 SCG2mRNA表达水平检测 | 第41-42页 |
| 7.2.3 SCG2蛋白表达水平检测 | 第42页 |
| 7.2.4 SCG2的亚细胞分布 | 第42-43页 |
| 7.2.5 SCG2干扰后星形胶质细胞特征性因子的表达 | 第43-44页 |
| 7.2.6 SCG2与IL-6和GS的亚细胞共定位 | 第44页 |
| 7.2.7 统计学分析 | 第44页 |
| 8 结果 | 第44-50页 |
| 8.1 PQ诱导U118细胞SCG2mRNA表达水平变化 | 第44-45页 |
| 8.2 PQ诱导U118细胞SCG2蛋白表达水平变化 | 第45页 |
| 8.3 PQ诱导U118细胞内SCG2蛋白核周聚集 | 第45-46页 |
| 8.4 U118细胞分泌出胞的SCG2蛋白水平低 | 第46-47页 |
| 8.5 SCG2 沉默后 IL-6 和 GS m RNA 表达水平降低 | 第47页 |
| 8.6 SCG2沉默后IL-6蛋白表达水平降低 | 第47-48页 |
| 8.7 U118细胞中SCG2与IL-6部分共定位 | 第48-50页 |
| 9 讨论 | 第50-53页 |
| 9.1 SCG2的生理作用及与反应性星形胶质细胞激活 | 第50页 |
| 9.2 SCG2在星形胶质细胞神经炎性因子分泌中的作用 | 第50-51页 |
| 9.3 SCG2在星形胶质细胞兴奋性神经递质表达和分泌中的作用 | 第51-53页 |
| 10 结论 | 第53-54页 |
| 第三部分 ：百草枯诱导的U118细胞反应性激活中分泌粒蛋白III表达变化研究 | 第54-70页 |
| 11 前言 | 第54-55页 |
| 12 材料与方法 | 第55-59页 |
| 12.1 实验材料 | 第55-56页 |
| 12.1.1 实验样品 | 第55页 |
| 12.1.2 主要试剂与耗材 | 第55-56页 |
| 12.1.3 主要仪器 | 第56页 |
| 12.2 实验方法 | 第56-59页 |
| 12.2.1 细胞培养 | 第57页 |
| 12.2.2 SCG3mRNA表达水平检测 | 第57-58页 |
| 12.2.3 SCG3蛋白表达水平检测 | 第58页 |
| 12.2.4 SCG3的亚细胞分布 | 第58-59页 |
| 12.2.5 SCG3干扰后星形胶质细胞特征性因子的表达 | 第59页 |
| 12.2.6 SCG2与BDNF和IL-6的亚细胞共定位 | 第59页 |
| 12.2.7 统计学分析 | 第59页 |
| 13 结果 | 第59-66页 |
| 13.1 PQ诱导U118细胞SCG3mRNA表达水平变化 | 第59-60页 |
| 13.2 PQ诱导U118细胞SCG3蛋白表达水平逐渐升高 | 第60-61页 |
| 13.3 PQ诱导U118细胞内SCG3蛋白核周聚集 | 第61-62页 |
| 13.4 PQ诱导U118细胞分泌出胞的SCG3蛋白量改变 | 第62-63页 |
| 13.5 SCG3沉默后星形胶质细胞特异性因子表达未受影响 | 第63-64页 |
| 13.6 U118细胞中SCG3与BDNF部分共定位 | 第64-66页 |
| 14 讨论 | 第66-69页 |
| 14.1 SCG3与反应性星形胶质细胞激活 | 第66-67页 |
| 14.2 SCG3在星形胶质细胞神经炎性因子分泌中的作用 | 第67页 |
| 14.3 SCG3在星形胶质细胞神经营养因子分泌中的作用 | 第67-69页 |
| 15 结论 | 第69-70页 |
| 本研究创新性的自我评价 | 第70-71页 |
| 参考文献 | 第71-78页 |
| 综述 | 第78-91页 |
| 参考文献 | 第86-91页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第91-92页 |
| 致谢 | 第92-93页 |
| 个人简历 | 第93页 |
