摘要 | 第10-12页 |
ABSTRACT | 第12-13页 |
符号说明及缩写词 | 第14-15页 |
第一章 文献综述 | 第15-30页 |
1.1 细菌质粒的概述 | 第15-17页 |
1.1.1 质粒的生物学特性 | 第15-16页 |
1.1.2 质粒的入侵 | 第16页 |
1.1.3 质粒的存留与适应 | 第16-17页 |
1.2 质粒稳定遗传的机制 | 第17-26页 |
1.2.1 质粒的复制与拷贝数控制 | 第19-21页 |
1.2.2 质粒的多聚体解聚系统 | 第21-22页 |
1.2.3 质粒的主动分配系统 | 第22-24页 |
1.2.4 质粒的后自杀系统 | 第24-26页 |
1.3 粘细菌的内源性质粒 | 第26-28页 |
1.3.1 粘细菌(myxobacteria)简介 | 第26-27页 |
1.3.2 粘细菌内源性质粒的发现 | 第27-28页 |
1.4 本论文的开展思路以及研究内容 | 第28-30页 |
第二章 pMF1主动分配系统的研究 | 第30-54页 |
2.1 实验材料 | 第31-35页 |
2.1.1 质粒与菌株 | 第31页 |
2.1.2 培养基 | 第31-32页 |
2.1.3 实验试剂 | 第32-34页 |
2.1.4 仪器设备 | 第34-35页 |
2.1.5 数据库及软件工具 | 第35页 |
2.2 实验方法 | 第35-44页 |
2.2.1 大肠杆菌Escherichia coli DH5α和E.coli BL21 (DE3)感受态细胞的制备 | 第35-36页 |
2.2.2 ParA与ParC蛋白体外相互作用检测 | 第36-43页 |
2.2.3 ParC蛋白结构的解析 | 第43-44页 |
2.3 实验结果和实验分析 | 第44-52页 |
2.3.1 ParC与ParA蛋白的生物信息学分析 | 第44-47页 |
2.3.2 ParC与ParA蛋白的体外pull-down实验 | 第47-48页 |
2.3.3 尝试结晶ParC蛋白并解析其结构 | 第48-52页 |
2.4 本章小结 | 第52-54页 |
第三章 pMF1.19-pMF1.20的功能 | 第54-71页 |
3.1 实验材料 | 第55-56页 |
3.1.1 菌株与质粒 | 第55-56页 |
3.1.2 培养基 | 第56页 |
3.1.3 实验试剂 | 第56页 |
3.1.4 仪器设备 | 第56页 |
3.2 实验方法 | 第56-61页 |
3.2.1 pMF1.19-pMF1.20的生物信息学分析 | 第56页 |
3.2.2 pMF1.19-pMF1.20对质粒稳定性的影响 | 第56-61页 |
3.2.3 pMF1.19-pMF1.20对菌株生长的影响 | 第61页 |
3.3 实验结果和实验分析 | 第61-69页 |
3.3.1 来自宿主基因组的pMF1.19和pMF1.20在功能上相关 | 第61-66页 |
3.3.2 共转录的pMF1.19-pMF1.20影响质粒的稳定遗传 | 第66-68页 |
3.3.3 pMF1.19-pMF1.20对菌株生长的影响 | 第68-69页 |
3.4 本章小结 | 第69-71页 |
第四章 pMF1后自杀系统的性质分析 | 第71-84页 |
4.1 实验材料 | 第72-73页 |
4.1.1 菌株与质粒 | 第72页 |
4.1.2 培养基 | 第72页 |
4.1.3 实验试剂 | 第72页 |
4.1.4 实验仪器 | 第72-73页 |
4.2 实验方法 | 第73-78页 |
4.2.1 pMF1.19和pMF1.20蛋白的结构预测 | 第73页 |
4.2.2 pMF1.19和pMF1.20在大肠杆菌中异源表达 | 第73-76页 |
4.2.3 pMF1.20蛋白的核酸酶活性检测 | 第76-78页 |
4.3 实验结果和实验分析 | 第78-82页 |
4.3.1 pMF1.19-pMF1.20蛋白的结构预测 | 第78-79页 |
4.3.2 pMF1.19-pMF1.20操纵子编码一个效应物-免疫蛋白系统 | 第79-81页 |
4.3.3 pMF1.20蛋白的核酸酶活性检测 | 第81-82页 |
4.4 本章小结 | 第82-84页 |
总结与展望 | 第84-86页 |
附录 | 第86-89页 |
参考文献 | 第89-99页 |
致谢 | 第99-100页 |
攻读学位期间发表的论文 | 第100-101页 |
附件 | 第101页 |