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MYB、bHLH、WD40类转录因子对茄科植物苯丙烷物质合成调控研究

摘要第11-13页
ABSTRACT第13-14页
第一章 文献综述第15-38页
    前言第15页
    1 植物苯丙烷类物质研究简介第15-38页
        1.1 植物苯丙烷类物质的结构及功能第15-23页
            1.1.1 黄酮醇物质结构与功能第18-19页
            1.1.2 花青素结构与功能第19-21页
            1.1.3 酚酸类物质结构与功能第21-23页
        1.2 苯丙烷类物质的合成代谢调控第23-27页
            1.2.1 黄酮醇物质合成代谢调控第24-25页
            1.2.2 花青素物质合成代谢调控第25-26页
            1.2.3 咖啡酰奎尼酸合成代谢调控第26-27页
        1.3 MYB、bHLH、WD40类转录因子研究进展第27-34页
            1.3.1 MYB、bHLH、WD40类转录因子调控类黄酮合成及其DNA结合位点第28-29页
            1.3.2 MYB、bHLH、WD40类转录因子的进化及其他功能第29-30页
            1.3.3 MYB转录因子研究进展第30-32页
                1.3.3.1 AtMYB12转录因子研究进展第30-31页
                1.3.3.2 SlMYB12转录因子研究进展第31-32页
                1.3.3.3 Rosea1转录因子研究进展第32页
            1.3.4 bHLH转录因子研究进展第32-33页
                1.3.4.1 Delila转录因子研究进展第33页
            1.3.5 WD40转录因子研究进展第33-34页
        1.4 果实特异性启动子调控转录因子研究第34-36页
            1.4.1 番茄果实特异性启动子E8第34-35页
            1.4.2 番茄果实特异性启动子E4第35-36页
            1.4.3 番茄果实特异性启动子PG第36页
            1.4.4 番茄果实特异性启动子 2A12第36页
        1.5 研究目的与意义第36-38页
第二章 MYB、bHLH、WD40类转录因子对番茄中苯丙烷类物质合成调控研究第38-60页
    1 材料与方法第38-47页
        1.1 材料第38-39页
            1.1.1 供试植物材料第38页
            1.1.2 菌株和载体第38页
            1.1.3 酶与生化试剂第38页
            1.1.4 实验仪器第38-39页
            1.1.5 溶液及培养基的配制第39页
        1.2 实验方法第39-47页
            1.2.1 PCR引物设计第39页
            1.2.2 转基因植株阳性检测第39页
            1.2.3 RNA的抽提第39-40页
            1.2.4 反转录及定量PCR第40-41页
            1.2.5 基因克隆及纯化第41-43页
            1.2.6 载体构建第43页
            1.2.7 感受态细胞的制备第43-44页
            1.2.8 热激转化大肠杆菌(DH5α)第44页
            1.2.9 转化菌落阳性鉴定第44页
            1.2.10 质粒DNA的提取第44-45页
            1.2.11 酵母双杂交互作验证第45页
            1.2.12 序列测定第45页
            1.2.13 3种转AtMYB12、Ros1、Del基因番茄的转录组测序方案设计第45-46页
            1.2.14 苯丙烷类物质含量测定第46-47页
    2 结果与分析第47-58页
        2.1 3种转AtMYB12、Ros1、Del基因番茄果皮中苯丙烷类物质含量检测第47-49页
        2.2 3种转AtMYB12、Ros1、Del基因番茄的转录组测序数据分析第49-54页
        2.3 qRT-PCR检测候选基因在转基因果实不同发育阶段表达量变化第54-56页
        2.4 候选转录因子与AtMYB12、Ros1的互作验证第56-58页
            2.4.1 候选转录因子基因与AtMYB12、Ros1基因的AD及BD载体构建第57页
            2.4.2 候选转录因子与AtMYB12、Ros1的互作验证第57-58页
    3 讨论第58-60页
        3.1 qRT-PCR验证候选转录因子对相应苯丙烷物质的调控功能第58-59页
        3.2 候选转录因子与AtMYB12及Ros1蛋白的互作验证第59-60页
第三章 MYB类转录因子对龙葵花青素合成调控研究第60-73页
    1 材料与方法第60-64页
        1.1 材料及培养第60页
            1.1.1 供试植物材料第60页
            1.1.2 菌株和载体第60页
        1.2 实验方法第60-64页
            1.2.1 PCR引物设计第60-61页
            1.2.2 RNA的抽提第61页
            1.2.3 反转录及定量PCR第61页
            1.2.4 RACE-PCR基因克隆第61-62页
            1.2.5 序列测定第62页
            1.2.6 电转化农杆菌(GV3101)第62页
            1.2.7 转化菌落的阳性鉴定第62-63页
            1.2.8 农杆菌介导的瞬时表达第63页
            1.2.9 花青素含量测定第63页
            1.2.10 花青素提取纯化第63-64页
            1.2.11 花青素组分质谱鉴定第64页
    2 结果与分析第64-71页
        2.1 龙葵鲜果中花青素含量及抗氧化分析第64-65页
        2.2 龙葵果实花青素提取物的纯化第65页
        2.3 龙葵果实花青素组分的质谱鉴定第65-68页
        2.4 龙葵SnMYB基因的克隆及功能预测第68-69页
        2.5 龙葵SnMYB基因对花青素调控功能验证第69-71页
    3 讨论第71-73页
        3.1 龙葵果实花青素含量及抗氧化分析第71页
        3.2 龙葵花青素组分鉴定第71-72页
        3.3 SnMYB基因的克隆及功能分析第72页
        3.4 SnMYB基因对花青素合成调控功能验证第72-73页
第四章 不同果实特异性启动子驱动AtMYB12转录因子调控番茄中苯丙烷物质合成研究第73-84页
    1 材料与方法第73-76页
        1.1 材料第73页
            1.1.1 供试植物材料第73页
        1.2 实验方法第73-76页
            1.2.1 PCR引物设计第73页
            1.2.2 RNA的抽提第73-74页
            1.2.3 反转录及定量PCR第74页
            1.2.4 基因克隆及纯化第74页
            1.2.5 载体构建第74-75页
            1.2.6 序列测定第75页
            1.2.7 农杆菌介导的番茄遗传转化第75页
            1.2.8 DNA提取及转基因植株阳性检测第75页
            1.2.9 转基因植株中苯丙烷物质含量检测第75-76页
    2 结果与分析第76-82页
        2.1 不同启动子基因植物表达载体的构建第76-78页
            2.1.1 不同启动子PG、2A12、E4、E8S、E8L基因及AtMYB12基因的克隆第76页
            2.1.2 过渡载体pX6-PG、pX6-2A12、pX6-E4、pX6-E8S、pX6-E8L的构建第76页
            2.1.3 番茄表达载体的构建第76-77页
            2.1.4 番茄表达载体转化农杆菌(AGL I)第77-78页
        2.2 农杆菌介导的番茄遗传转化第78-79页
        2.3 转基因番茄果实苯丙烷物质含量检测第79-81页
        2.4 转基因番茄果实中AtMYB12基因表达量分析第81-82页
    3 讨论第82-84页
        3.1 不同启动子驱动AtMYB12基因对不同苯丙烷类物质调控差异第82页
        3.2 不同启动子驱动AtMYB12基因表达效率差异第82-84页
第五章 番茄SlMYB12转录因子对不同番茄品种中黄酮醇物质合成调控研究第84-96页
    1 材料与方法第84-88页
        1.1 材料第84页
            1.1.1 供试植物材料第84页
        1.2 实验方法第84-88页
            1.2.1 PCR引物设计第84-85页
            1.2.2 RNA的抽提第85页
            1.2.3 反转录及定量PCR第85-86页
            1.2.4 DNA抽取第86页
            1.2.5 转基因植株阳性检测第86页
            1.2.6 转基因植物中黄酮醇物质含量检测第86-87页
            1.2.7 转基因番茄抗氧化能力分析第87-88页
    2 结果与分析第88-94页
        2.1 3种不同品种野生型番茄果实差异比较第88-90页
        2.2 3种不同品种转SlMYB12基因番茄差异比较第90-94页
    3 讨论第94-96页
        3.1 3种不同品种野生型番茄果实差异比较第94-95页
        3.2 3种转SlMYB12基因番茄果实差异比较第95-96页
结论第96-97页
参考文献第97-112页
附录Ⅰ第112-113页
附录Ⅱ第113-114页
附录Ⅲ第114-115页
致谢第115-116页
攻读博士期间发表论文及申请专利情况第116页

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