| 致谢 | 第4-7页 |
| 摘要 | 第7-8页 |
| 1 文献综述 | 第8-14页 |
| 1.1 SA 与植物抗病胁迫 | 第8-10页 |
| 1.1.1 SA 在植物抗病中的作用 | 第8-9页 |
| 1.1.2 SA 在植物抗病中的信号转导途径 | 第9页 |
| 1.1.3 SA 提高植物抗病性的相关元件的分离鉴定 | 第9-10页 |
| 1.2 SA 提高植物抗环境胁迫能力的研究 | 第10-13页 |
| 1.2.1 SA 提高植物抗环境胁迫的效应 | 第10-11页 |
| 1.2.2 SA 提高植物抗环境胁迫的响应机制 | 第11-12页 |
| 1.2.3 SA 提高植物抗环境胁迫能力相关元件的分离鉴定 | 第12页 |
| 1.2.4 SA 提高植物抗病和抗环境胁迫的异同 | 第12-13页 |
| 1.3 SA 提高植物抗病能力和抗环境胁迫能力研究水平的比较 | 第13-14页 |
| 2 引言 | 第14-15页 |
| 3 材料与方法 | 第15-21页 |
| 3.1 材料、试剂和仪器 | 第15页 |
| 3.1.1 小麦材料与SA 处理 | 第15页 |
| 3.1.2 盐处理 | 第15页 |
| 3.1.3 所用试剂 | 第15页 |
| 3.1.4 所用仪器 | 第15页 |
| 3.2 测定项目与方法 | 第15页 |
| 3.2.1 形态指标 | 第15页 |
| 3.2.2 生理生化指标 | 第15页 |
| 3.2.3 蛋白质组分析 | 第15页 |
| 3.3 蛋白质提取及双向电泳方法 | 第15-21页 |
| 3.3.1 蛋白质提取方法 | 第16页 |
| 3.3.1.1 三氯乙酸/丙酮法（TCA/acetone extraction） | 第16页 |
| 3.3.1.2 改良的酚提取法（TCA/acetone/phenol extraction） | 第16页 |
| 3.3.2 蛋白质的裂解 | 第16-17页 |
| 3.3.3 蛋白质样品浓度测定 | 第17页 |
| 3.3.4 等电聚焦（IEF）电泳条件的优化 | 第17-18页 |
| 3.3.5 IPG 胶条的平衡 | 第18-19页 |
| 3.3.6 第二向SDS-PAGE | 第19页 |
| 3.3.7 胶体染色 | 第19-20页 |
| 3.3.8 凝胶图像分析、蛋白质点的胶内酶解和质谱分析 | 第20-21页 |
| 4 结果与分析 | 第21-34页 |
| 4.1 SA 对小麦幼苗生长的影响 | 第21-22页 |
| 4.2 SA 对小麦幼苗叶片MDA 含量的影响 | 第22页 |
| 4.3 SA 对盐胁迫条件下小麦幼苗生长的影响 | 第22-23页 |
| 4.4 SA 提高植物抗逆性的蛋白质组学研究 | 第23-27页 |
| 4.4.1 小麦叶片蛋白质样品的制备 | 第24页 |
| 4.4.2 不同IPG 胶条对蛋白质分辨率的影响 | 第24-25页 |
| 4.4.3 不同上样量对蛋白质分辨率的影响 | 第25-26页 |
| 4.4.4 不同聚焦条件对双向电泳图谱的影响 | 第26-27页 |
| 4.5 SA 预处理对小麦叶片蛋白组学的影响 | 第27-29页 |
| 4.6 差异表达蛋白点的质谱鉴定 | 第29-34页 |
| 5 结论与讨论 | 第34-37页 |
| 5.1 SA 提高小麦抗逆性的最佳浓度筛选 | 第34页 |
| 5.2 小麦叶片双向电泳技术的优化 | 第34-35页 |
| 5.3 SA 诱导的差异表达蛋白质的功能 | 第35-37页 |
| 5.3.1 经0.5 mM SA 预处理后表达量显著上调，而经3 mM SA 预处理后表达量显著下调的差异蛋白 | 第35-36页 |
| 5.3.2 经0.5 mM SA 和3 mM SA 预处理后表达量均显著上调或下调的差异蛋白 | 第36页 |
| 5.3.3 经0.5 mM SA 或3 mM SA预处理后表达量显著上调或下调的差异蛋白 | 第36-37页 |
| 参考文献 | 第37-45页 |
| ABSTRACT | 第45-46页 |
