| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 缩略语 | 第12-16页 |
| 前言 | 第16-19页 |
| 研究现状、成果 | 第16-17页 |
| 研究目的、方法 | 第17-19页 |
| 一、食源性肥胖和肥胖抵抗大鼠模型的建立 | 第19-36页 |
| 1.1 对象和方法 | 第19-21页 |
| 1.1.1 建立动物模型 | 第19-20页 |
| 1.1.2 动物饲料 | 第20页 |
| 1.1.3 大鼠外周血及器官的提取 | 第20页 |
| 1.1.4 Elisa测定大鼠血清瘦素、胰岛素含量 | 第20-21页 |
| 1.1.5 测定大鼠血清生化指标 | 第21页 |
| 1.2 结果 | 第21-25页 |
| 1.2.1 高能饲料喂养后大鼠体重的变化 | 第21-23页 |
| 1.2.2 高能饲料喂养后大鼠内脏重量和血清生化指标的变化 | 第23-24页 |
| 1.2.3 Elisa测定大鼠瘦素、胰岛素的含量 | 第24-25页 |
| 1.3 讨论 | 第25-34页 |
| 1.3.1 肥胖动物模型的选择和建立 | 第26-27页 |
| 1.3.2 肥胖对血清瘦素和胰岛素水平的影响 | 第27-30页 |
| 1.3.3 肥胖与瘦素抵抗和胰岛素抵抗 | 第30-34页 |
| 1.4 小结 | 第34-36页 |
| 二、2D-DIGE结合串联质谱技术筛选下丘脑差异表达蛋白质 | 第36-54页 |
| 2.1 材料和方法 | 第36-42页 |
| 2.1.1 主要仪器 | 第36页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第36-37页 |
| 2.1.3 样品制备和蛋白定量 | 第37-38页 |
| 2.1.4 荧光差异双向电泳 | 第38-41页 |
| 2.1.5 固定与染色 | 第41-42页 |
| 2.1.6 图像扫描 | 第42页 |
| 2.1.7 图像分析 | 第42页 |
| 2.1.8 质谱分析 | 第42页 |
| 2.2 结果 | 第42-51页 |
| 2.2.1 Bradford法检测样本定量结果 | 第42-43页 |
| 2.2.2 下丘脑蛋白质组的2D-DIGE差异分析 | 第43-47页 |
| 2.2.3 差异蛋白质点的MALDI-TOF-MS/MS质谱鉴定及数据库检索 | 第47-51页 |
| 2.3 讨论 | 第51-52页 |
| 2.4 小结 | 第52-54页 |
| 三、下丘脑差异表达蛋白在外周器官的表达 | 第54-92页 |
| 3.1 材料与方法 | 第54-64页 |
| 3.1.1 免疫荧光检测差异蛋白在胰腺、肝脏、骨骼肌的表达差异 | 第54-56页 |
| 3.1.2 Western Blotting检测差异蛋白在胰腺、肝脏、骨骼肌的表达差异 | 第56-59页 |
| 3.1.3 半定量RT-PCR方法验证PDIA3、Tubulin-bata3、SNAP-25和GLUT4mRNA在胰腺、肝脏和骨骼肌的表达 | 第59-64页 |
| 3.1.4 实验数据处理和统计学分析 | 第64页 |
| 3.2 结果 | 第64-76页 |
| 3.2.1 免疫荧光技术验证差异蛋白在胰腺、肝脏、骨骼肌的表达差异 | 第64-70页 |
| 3.2.2 Western Blotting方法验证差异蛋白在胰腺、肝脏、骨骼肌的表达差异 | 第70-72页 |
| 3.2.3 半定量RT-PCR方法验证PDIA3、Tubulin-bata3、SNAP-25和GLUT4mRNA在胰腺、肝脏和骨骼肌的表达 | 第72-76页 |
| 3.3 讨论 | 第76-90页 |
| 3.3.1 葡萄糖转运体蛋白4与肥胖 | 第76-78页 |
| 3.3.2 突触相关蛋白与肥胖 | 第78-80页 |
| 3.3.3 细胞骨架蛋白与肥胖 | 第80-81页 |
| 3.3.4 蛋白质合成与肥胖 | 第81-86页 |
| 3.3.5 氧化应激与肥胖 | 第86-90页 |
| 3.4 小结 | 第90-92页 |
| 全文结论 | 第92-93页 |
| 论文创新点 | 第93-94页 |
| 参考文献 | 第94-111页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第111-112页 |
| 综述 | 第112-134页 |
| 肥胖的相关激素及其对代谢的调节 | 第112-125页 |
| 综述参考文献 | 第125-134页 |
| 致谢 | 第134页 |
