中文摘要 | 第4-8页 |
Abstract | 第8-12页 |
符号说明 | 第16-17页 |
前言 | 第17-23页 |
研究现状、成果 | 第17-22页 |
研究目的、方法 | 第22-23页 |
一、EMT转录调控因子Slug能促进HCC中VM的形成 | 第23-53页 |
1.1 对象和方法 | 第23-35页 |
1.1.1 病例资料 | 第23-25页 |
1.1.2 石蜡切片制备 | 第25-26页 |
1.1.3 HE染色 | 第26页 |
1.1.4 免疫组织化学染色 | 第26-27页 |
1.1.5 CD31与PAS双重染色方法 | 第27页 |
1.1.6 免疫组化双重染色 | 第27-28页 |
1.1.7 细胞系和培养条件 | 第28页 |
1.1.8 细胞转染及建立稳转细胞系 | 第28-31页 |
1.1.9 Western Blot | 第31-32页 |
1.1.10 免疫荧光染色 | 第32页 |
1.1.11 三维培养 | 第32-33页 |
1.1.12 动物实验 | 第33-35页 |
1.1.13 统计学分析 | 第35页 |
1.2 结果 | 第35-49页 |
1.2.1 HCC中存在VM | 第35-36页 |
1.2.2 Slug与VM的形成相关 | 第36-39页 |
1.2.3 在HCC临床病例中Slug的表达与转移和生存预后相关 | 第39-41页 |
1.2.4 Slug过表达能够促进HCC细胞VM的形成的体外研究 | 第41-46页 |
1.2.5 在体内过表达Slug同样能够促进HCC细胞形成VM | 第46-49页 |
1.3 讨论 | 第49-52页 |
1.3.1 Slug是促进肝癌组织中形成VM的重要因子 | 第49-50页 |
1.3.2 Slug的过表达影响肿瘤的转移与患者的预后 | 第50-51页 |
1.3.3 Slug能够上调VE-cadherin、VEGF的表达促进VM的形成 | 第51-52页 |
1.4 小结 | 第52-53页 |
二、转录因子Slug能够诱导上皮间-充质转变 | 第53-62页 |
2.1 对象和方法 | 第53-55页 |
2.1.1 临床病例 | 第53-54页 |
2.1.2 体外实验 | 第54-55页 |
2.1.3 体内试验 | 第55页 |
2.2 结果 | 第55-59页 |
2.2.1 Slug与EMT相关蛋白之间的关系 | 第55-58页 |
2.2.2 Slug过表达能增强细胞的侵袭能力 | 第58-59页 |
2.3 讨论 | 第59-61页 |
2.3.1 slug是重要的EMT调控分子 | 第59-60页 |
2.3.2 过表达Slug能够增强肝癌细胞侵袭和转移能力 | 第60页 |
2.3.3 EMT的发生在VM形成的过程中扮演着重要的角色 | 第60-61页 |
2.4 小结 | 第61-62页 |
三、Slug与肿瘤细胞细胞干细胞特性之间的关系 | 第62-85页 |
3.1 对象和方法 | 第62-66页 |
3.1.1 临床病例 | 第62-63页 |
3.1.2 蛋白检测 | 第63页 |
3.1.3 软琼脂克隆形成实验 | 第63-64页 |
3.1.4 细胞增殖实验(SRB) | 第64页 |
3.1.5 凋亡检测 | 第64页 |
3.1.6 流式细胞仪分析细胞表型 | 第64-65页 |
3.1.7 染色质免疫共沉淀与基因芯片 | 第65-66页 |
3.2 结果 | 第66-80页 |
3.2.1 Slug的表达能够使HCC细胞具有干细胞表型 | 第66-70页 |
3.2.2 Slug的表达与细胞重编程转录因子之间的关系 | 第70-72页 |
3.2.3 HCC干细胞参与了肿瘤VM的形成 | 第72-75页 |
3.2.4 抑制转录因子Slug的表达能够诱导细胞凋亡,减少肿瘤干细胞标志物的表达及抑制VM的形成 | 第75-77页 |
3.2.5 Slug促进CSC及VM形成的相关信号通路 | 第77-80页 |
3.3 讨论 | 第80-84页 |
3.3.1 EMT与CSCs之间有着不可分割的关系 | 第80-81页 |
3.3.2 Slug能够影响CSC的形成 | 第81-82页 |
3.3.3 CSC参与了VM的形成 | 第82-84页 |
3.4 小结 | 第84-85页 |
全文结论 | 第85-87页 |
论文创新点 | 第87-88页 |
参考文献 | 第88-102页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第102-103页 |
附录 | 第103-113页 |
综述 | 第113-124页 |
综述参考文献 | 第117-124页 |
致谢 | 第124页 |