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卡介苗基因缺失株BCGΔWag22的构建及BALB/c小鼠潜伏感染模型的建立

摘要第8-10页
Abstract第10-11页
缩略语表(Abbreviations)第12-13页
1 前言第13-22页
    1.1 结核病的发现第13页
    1.2 结核病的国内外现状第13-14页
    1.3 结核病的病原学第14页
    1.4 结核分枝杆菌与宿主的作用机制第14-15页
    1.5 结核病疫苗的研制第15-17页
        1.5.1 减毒活疫苗—卡介苗第15-16页
        1.5.2 重组BCG疫苗和减毒活性结核疫苗第16页
        1.5.3 亚单位疫苗和活载体疫苗第16-17页
        1.5.4 DNA疫苗第17页
        1.5.5 灭活疫苗第17页
    1.6 PE/PPE蛋白家族第17-22页
        1.6.1 pe/ppe家族的进化和变异第18页
        1.6.2 PE/PPE家族的调控第18-21页
        1.6.3 PE/PPE家族蛋白与宿主免疫应答反应的关系第21-22页
2 研究目的与意义第22-23页
3 实验材料第23-27页
    3.1 培养基及主要抗生素的配制第23页
    3.2 各种分子生物学酶、常用试剂盒及常用试剂第23-24页
    3.3 溶液及缓冲液第24-25页
    3.4 质粒第25页
    3.5 菌株第25-26页
    3.6 引物序列表第26-27页
4 实验方法第27-41页
    4.1 卡介苗BCG缺失突变株的构建第27-34页
        4.1.1 卡介苗BCG同源载体的构建第27-32页
        4.1.2 分枝杆菌噬菌体的制备第32-33页
        4.1.3 分枝杆菌噬菌体感染BCG获得基因缺失株第33页
        4.1.4 缺失突变株的鉴定第33-34页
    4.2 缺失突变株BCGΔWag22菌落形态的变化第34-35页
    4.3 缺失突变株BCGΔWag22生长曲线的测定第35页
        4.3.1 原始菌液的处理第35页
        4.3.2 生长曲线的测定第35页
    4.4 吞噬存活实验第35-36页
        4.4.1 细胞与细菌培养第35-36页
    4.5 BCG?Wag22对RAW264.7细胞毒性实验第36-37页
        4.5.1 细胞与细菌培养第36页
        4.5.2 不同菌株与RAW264.7细胞互作第36页
        4.5.3 LDH Cytotoxicity Assay Kit工作液的准备第36页
        4.5.4 样品的测定第36-37页
    4.6 PE-PGRS家族蛋白Wag22对小鼠巨噬细胞RAW264.7的作用第37-40页
        4.6.1 原核表达载体的构建第37-39页
        4.6.2 蛋白质的小量表达及表达条件的优化第39页
        4.6.3 蛋白质的大量表达及包涵体蛋白的提取第39-40页
    4.7 动物实验—潜伏感染模型的建立第40-41页
5 结果与分析第41-57页
    5.1 缺失突变体的构建第41-44页
        5.1.1 BCG缺失突变株的构建第41-44页
    5.2 缺失突变株BCGΔWag22菌落形态的变化第44-45页
    5.3 生长曲线的测定第45-46页
    5.4 吞噬存活实验第46页
    5.5 BCG?Wag22对RAW264.7细胞毒性实验第46-47页
    5.6 原核表达结核分枝杆菌PE-PGRS家族蛋白Wag22第47-52页
        5.6.1 目的蛋白Wag22理化性质和二级结构的分析第47-49页
        5.6.2 原核表达载体的构建第49-50页
        5.6.3 蛋白Wag22的诱导表达及表达条件的优化第50-51页
        5.6.4 包涵体蛋白的提取、纯化及Western blot验证第51-52页
    5.7 动物实验—潜伏感染模型的建立第52-57页
        5.7.1 体重的监测第52-53页
        5.7.2 相关病理变化第53-56页
        5.7.3 细胞因子的变化第56-57页
6 讨论第57-59页
    6.1 新型结核缺失突变株的构建方法分析第57页
    6.2 PE-PGRS家族蛋白Wag22第57-58页
    6.3 细胞因子与免疫反应第58-59页
7 结论第59-60页
参考文献第60-68页
致谢第68页

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