| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7页 |
| 英文缩略表 | 第11-12页 |
| 第一章 引言 | 第12-22页 |
| 1.1 埃博拉和马尔堡出血热研究进展 | 第12-15页 |
| 1.1.1 埃博拉和马尔堡出血热的病原学 | 第12页 |
| 1.1.2 埃博拉和马尔堡出血热的流行病学 | 第12-13页 |
| 1.1.3 埃博拉和马尔堡出血热的发病机制 | 第13页 |
| 1.1.4 埃博拉和马尔堡出血热的临床表现 | 第13-14页 |
| 1.1.5 埃博拉和马尔堡出血热的防控 | 第14-15页 |
| 1.2 埃博拉和马尔堡病毒的分子生物学特性 | 第15-16页 |
| 1.2.1 EBOV和MARV的分类和形态结构 | 第15页 |
| 1.2.2 EBOV和MARV的基因组结构 | 第15-16页 |
| 1.2.3 GP蛋白的结构功能特点 | 第16页 |
| 1.3 水泡性口炎病毒 | 第16-19页 |
| 1.3.1 水泡性口炎病毒概述 | 第16-17页 |
| 1.3.2 VSV基因组结构和功能 | 第17页 |
| 1.3.3 VSV的复制 | 第17-18页 |
| 1.3.4 VSV作为疫苗载体 | 第18-19页 |
| 1.4 国内外研究进展 | 第19-21页 |
| 1.5 研究目的和意义 | 第21-22页 |
| 第二章 实验部分 | 第22-35页 |
| 2.1 材料 | 第22页 |
| 2.1.1 病毒和细胞 | 第22页 |
| 2.1.2 质粒 | 第22页 |
| 2.1.3 血清和实验动物 | 第22页 |
| 2.1.4 主要试剂 | 第22页 |
| 2.2 方法 | 第22-27页 |
| 2.2.1 VSV全长cDNA重组质粒pCI-Rz-VSV*EGFP-FL酶切位点的改造 | 第22-23页 |
| 2.2.2 表达外源GP基因嵌合型重组VSV基因组全长cDNA的构建 | 第23-25页 |
| 2.2.3 重组病毒的拯救 | 第25页 |
| 2.2.4 重组病毒的RT-PCR鉴定 | 第25页 |
| 2.2.5 GP蛋白在感染细胞中的的表达 | 第25页 |
| 2.2.6 重组病毒的形态及GP蛋白在病毒粒子表面的分布 | 第25-26页 |
| 2.2.7 重组病毒的体外生长动力学 | 第26页 |
| 2.2.8 重组病毒对小鼠安全性的试验 | 第26页 |
| 2.2.9 小鼠的免疫试验 | 第26页 |
| 2.2.10 小鼠血清GP特异性IgG，IgG1和IgG2a水平测定 | 第26-27页 |
| 2.2.11 小鼠血清中和抗体水平测定 | 第27页 |
| 2.3 结果 | 第27-35页 |
| 2.3.1 VSV全长cDNA重组质粒pCI-Rz-VSV*EGFP -FL酶切位点的改造 | 第27页 |
| 2.3.2 表达GP基因的重组病毒基因组全长cDNA的构建和重组病毒的拯救 | 第27-28页 |
| 2.3.3 重组病毒RT-PCR鉴定 | 第28页 |
| 2.3.4 Western blot检测GP在感染细胞中的表达 | 第28-29页 |
| 2.3.5 GP蛋白在重组病毒感染细胞中的表达及定位 | 第29页 |
| 2.3.6 重组病毒的形态特征 | 第29-30页 |
| 2.3.7 重组病毒的生长动力学 | 第30页 |
| 2.3.8 重组病毒对小鼠的安全性 | 第30-31页 |
| 2.3.9 血清特异性IgG含量测定 | 第31-33页 |
| 2.3.10 重组病毒诱导小鼠产生中和抗体水平分析 | 第33-35页 |
| 第三章 讨论 | 第35-38页 |
| 第四章 全文结论 | 第38-39页 |
| 参考文献 | 第39-46页 |
| 附录 | 第46-48页 |
| 致谢 | 第48-49页 |
| 作者简历 | 第49页 |
