摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
第1章 绪论 | 第11-33页 |
1.1 金黄色葡萄球菌 | 第11-12页 |
1.2 SEs的超抗原性质 | 第12-14页 |
1.3 超抗原相关信号通路 | 第14-19页 |
1.4 超抗原与细胞应答 | 第19-21页 |
1.5 SEs相关肠胃疾病 | 第21-23页 |
1.6 SEB作为生物战剂应用的潜能 | 第23-24页 |
1.7 超抗原休克小鼠模型 | 第24-26页 |
1.8 超抗原的治疗策略 | 第26-30页 |
1.9 结核分枝杆菌热休克蛋白 | 第30-33页 |
第2章 融合蛋白rS-H的表达及纯化 | 第33-58页 |
2.1 材料、仪器及溶液配制方法 | 第33-35页 |
2.1.1 材料 | 第33页 |
2.1.2 仪器 | 第33-34页 |
2.1.3 溶液配制 | 第34-35页 |
2.2 试验方法 | 第35-47页 |
2.2.1 原核表达载体pET-28a-rS-H的构建 | 第35-41页 |
2.2.2 融合蛋白rS-H的表达、粗纯及相关工艺优化 | 第41-44页 |
2.2.3 融合蛋白rS-H的精纯及其相关工艺优化 | 第44-47页 |
2.3 实验结果 | 第47-56页 |
2.3.1 重组表达质粒pET-28a-rS-H的鉴定 | 第47-49页 |
2.3.2 诱导表达条件及包涵体蛋白 rS-H 粗纯工艺条件优化结果 | 第49-52页 |
2.3.3 融合蛋白rS-H精纯及相关优化结果 | 第52-56页 |
2.4 讨论 | 第56-58页 |
第3章 融合蛋白rS-H的体液免疫效果研究 | 第58-73页 |
3.1 实验材料、仪器及溶液配制 | 第58-59页 |
3.1.1 材料 | 第58页 |
3.1.2 仪器 | 第58-59页 |
3.1.3 溶液配制 | 第59页 |
3.2 方法 | 第59-63页 |
3.2.1 体液免疫分组以及时间安排 | 第59-61页 |
3.2.2 腹腔攻毒及滴鼻攻毒模型毒素LD50的测定 | 第61页 |
3.2.3 SEB体内攻毒保护方案设计 | 第61-62页 |
3.2.4 体外抗体中和试验 | 第62-63页 |
3.3 结果 | 第63-71页 |
3.3.1 抗SEB特异性抗体滴度测定结果 | 第63-65页 |
3.3.2 腹腔攻毒试验与滴鼻攻毒实验LD50测定结果 | 第65页 |
3.3.3 SEB+LPS体内攻毒保护结果 | 第65-69页 |
3.3.4 体外抗体中和保护实验结果 | 第69-70页 |
3.3.5 组织病理切片分析结果 | 第70-71页 |
3.4 讨论 | 第71-73页 |
第4章 结论 | 第73-74页 |
致谢 | 第74-75页 |
参考文献 | 第75-80页 |