| 摘要 | 第8-9页 |
| 英文摘要 | 第9-10页 |
| 1 前言 | 第11-15页 |
| 1.1 研究的目的和意义 | 第11页 |
| 1.2 PPCK研究进展 | 第11-12页 |
| 1.3 PPCK在C4和CAM中的作用 | 第12-13页 |
| 1.4 逆境胁迫与光合作用的关系 | 第13-14页 |
| 1.5 本研究的课题来源及研究内容 | 第14-15页 |
| 1.5.1 本研究的课题来源 | 第14页 |
| 1.5.2 本研究的研究内容及技术路线 | 第14-15页 |
| 2 材料与方法 | 第15-27页 |
| 2.1 转GsPPCK1、GsPPCK3基因植株的分子生物学检测 | 第15-18页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第15页 |
| 2.1.2 试验方法 | 第15-18页 |
| 2.2 转GsPPCK1、GsPPCK3苜蓿的扦插扩繁 | 第18-19页 |
| 2.2.1 试验材料 | 第18-19页 |
| 2.2.2 试验方法 | 第19页 |
| 2.3 转GsPPCK1、GsPPCK3苜蓿的耐碱性分析 | 第19-22页 |
| 2.3.1 碱胁迫下表型分析 | 第19页 |
| 2.3.2 有机酸的积累 | 第19-20页 |
| 2.3.3 pH调节能力的研究 | 第20-22页 |
| 2.4 碱胁迫下转基因苜蓿光合生理指标的测定 | 第22-24页 |
| 2.4.1 光合作用相关指标的测定 | 第22-23页 |
| 2.4.2 C4关键酶PEPC、NADP-ME、PPDK，C3关键酶Rubisco、酶酶活测定 | 第23-24页 |
| 2.5 碱胁迫下转基因苜蓿光合作用相关基因的表达分析 | 第24-27页 |
| 2.5.1 试验材料 | 第24-25页 |
| 2.5.2 试验方法 | 第25-27页 |
| 3 结果与分析 | 第27-60页 |
| 3.1 转GsPPCKs基因植株的分子生物学检测。 | 第27-30页 |
| 3.1.1 抗性植株的PCR检测 | 第27-30页 |
| 3.2 转GsPPCK1、GsPPCK3苜蓿的扦插扩繁 | 第30-31页 |
| 3.3 转GsPPCK1、GsPPCK3苜蓿的耐碱性分析 | 第31-41页 |
| 3.3.1 碱胁迫下转基因植株的表型 | 第31-33页 |
| 3.3.2 转基因苜蓿有机酸的积累 | 第33-39页 |
| 3.3.3 转基因苜蓿p H调节能力的研究 | 第39-41页 |
| 3.4 转基因苜蓿光合生理指标变化 | 第41-55页 |
| 3.4.1 碱胁迫下GsPPCKs叶片光合生理指标变化 | 第41-48页 |
| 3.4.2 转基因苜蓿光合相关酶酶活的测定 | 第48-55页 |
| 3.5 转GsPPCKs基因苜蓿C4、C3关键酶酶基因表达的差异 | 第55-60页 |
| 3.5.1 碱胁迫下转GsPPCKs基因苜蓿PEPC基因表达情况测定 | 第55-56页 |
| 3.5.2 碱胁迫下转GsPPCKs基因苜蓿NADP-MDH基因表达情况测定 | 第56-57页 |
| 3.5.3 碱胁迫下转GsPPCKs基因苜蓿NADP-ME基因表达情况测定 | 第57页 |
| 3.5.4 碱胁迫下转GsPPCKs基因苜蓿PPDK基因表达情况测定 | 第57-58页 |
| 3.5.5 碱胁迫下转GsPPCKs基因苜蓿C3关键酶基因Rubisco基因表达情况测定 | 第58-60页 |
| 4 讨论 | 第60-63页 |
| 4.1 GsPPCK1和GsPPCK3基因的功能及不同之处 | 第60页 |
| 4.2 GsPPCK1、GsPPCK3超量表达对苜蓿耐碱性的正向调控作用 | 第60-61页 |
| 4.3 碱胁迫对光合代谢的影响 | 第61-62页 |
| 4.4 下一步工作展望 | 第62-63页 |
| 5 结论 | 第63-64页 |
| 5.1 获得耐碱性转GsPPCK1、GsPPCK3基因苜蓿 | 第63页 |
| 5.2 明确了转GsPPCK1、GsPPCK3基因苜蓿对碱胁迫的生理响应 | 第63页 |
| 5.3 GsPPCK1、GsPPCK3基因的超量表达促进了转基因苜蓿在碱胁迫下的光合效率 | 第63-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-71页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第71页 |
