| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第13-25页 |
| 1.1 红曲色素 | 第13-16页 |
| 1.1.1 红曲色素的生物合成 | 第13-14页 |
| 1.1.2 红曲色素的理化性质及其结构 | 第14-15页 |
| 1.1.3 红曲色素组分的分离纯化 | 第15-16页 |
| 1.2 萃取发酵 | 第16-21页 |
| 1.2.1 表面活性剂及Triton X-100 结构与性质 | 第16-17页 |
| 1.2.2 萃取发酵概述 | 第17-19页 |
| 1.2.3 有机物质与表面活性剂的分离 | 第19-21页 |
| 1.3 大孔树脂 | 第21-23页 |
| 1.3.1 大孔树脂的分类 | 第22页 |
| 1.3.2 大孔树脂的分离原理及其影响因素 | 第22-23页 |
| 1.3.3 大孔树脂吸附过程动力学研究 | 第23页 |
| 1.4 本论文的研究意义及内容 | 第23-25页 |
| 1.4.1 本课题研究的意义 | 第23-24页 |
| 1.4.2 本课题研究的主要内容 | 第24-25页 |
| 第二章 有机溶剂分离红曲色素与Triton X-100 | 第25-37页 |
| 2.1 实验材料 | 第25-27页 |
| 2.1.1 菌种 | 第25页 |
| 2.1.2 培养基 | 第25页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第25-26页 |
| 2.1.4 主要仪器 | 第26-27页 |
| 2.2 实验方法 | 第27-28页 |
| 2.2.1 种子培养方法 | 第27页 |
| 2.2.2 萃取发酵液的制备 | 第27-28页 |
| 2.2.3 胞外红曲色素色价的测定 | 第28页 |
| 2.2.4 薄层色谱(TLC) | 第28页 |
| 2.2.5 Triton X-100 的测定 | 第28页 |
| 2.3 实验方法 | 第28-30页 |
| 2.3.1 有机溶剂对Triton X-100 的萃取能力实验 | 第28页 |
| 2.3.2 不同温度下二氯甲烷萃取Triton X-100 实验 | 第28-29页 |
| 2.3.3 不同pH下色素的转化实验 | 第29页 |
| 2.3.4 不同pH下二氯甲烷萃取色素实验 | 第29页 |
| 2.3.5 多次反复萃取色素实验 | 第29-30页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第30-35页 |
| 2.4.1 有机溶剂对Triton X-100 的萃取能力的影响 | 第30-31页 |
| 2.4.2 温度对二氯甲烷萃取Triton X-100 的影响 | 第31页 |
| 2.4.3 萃取发酵红曲色素的亲水性转化 | 第31-33页 |
| 2.4.4 pH对二氯甲烷分离转化的色素与表面活性剂的影响 | 第33-35页 |
| 2.5 本章小结 | 第35-37页 |
| 第三章 纳米纤维素改性硅胶分离红曲色素和Triton X-100 | 第37-46页 |
| 3.1 实验材料 | 第37-38页 |
| 3.1.1 菌种 | 第37页 |
| 3.1.2 培养基 | 第37-38页 |
| 3.1.3 主要试剂 | 第38页 |
| 3.1.4 主要仪器 | 第38页 |
| 3.2 实验方法 | 第38-41页 |
| 3.2.1 种子培养方法 | 第38-39页 |
| 3.2.2 三氯甲烷萃取液的制备 | 第39页 |
| 3.2.3 三氯甲烷萃取液的硅胶柱层析 | 第39页 |
| 3.2.4 纳米纤维素改性滤纸 | 第39页 |
| 3.2.5 胞外红曲色素色价的测定 | 第39-40页 |
| 3.2.6 Triton X-100 的测定 | 第40-41页 |
| 3.3 实验方法 | 第41页 |
| 3.3.1 不同极性溶剂对色素和表面活性剂的洗脱实验 | 第41页 |
| 3.3.2 纳米纤维素改性原料的筛选 | 第41页 |
| 3.3.3 纳米纤维素改性硅胶层析柱制备 | 第41页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第41-44页 |
| 3.4.1 洗脱溶剂极性对色素和表面活性剂分离效果的影响 | 第41-42页 |
| 3.4.2 三氯甲烷萃取液的梯度洗脱 | 第42-43页 |
| 3.4.3 纳米纤维素对红曲色素和Triton X-100 的分离 | 第43-44页 |
| 3.4.4 改性硅胶的柱层析对红曲色素和Triton X-100 的分离 | 第44页 |
| 3.5 本章小结 | 第44-46页 |
| 第四章 萃取－吸附法分离萃取发酵液中红曲色素 | 第46-66页 |
| 4.1 实验材料 | 第46-47页 |
| 4.1.1 菌种 | 第46页 |
| 4.1.2 培养基 | 第46页 |
| 4.1.3 主要试剂 | 第46-47页 |
| 4.2 实验方法 | 第47-48页 |
| 4.2.1 种子培养方法 | 第47页 |
| 4.2.2 发酵液的制备 | 第47页 |
| 4.2.3 大孔树脂的预处理 | 第47页 |
| 4.2.4 胞外红曲色素色价的测定 | 第47-48页 |
| 4.2.5 大孔树脂的理化性质测定 | 第48页 |
| 4.2.6 Triton X-100 的测定 | 第48页 |
| 4.3 实验方法 | 第48-50页 |
| 4.3.1 有机溶剂的筛选 | 第48-49页 |
| 4.3.2 静态吸附 | 第49页 |
| 4.3.3 发酵液和COSP中形态和胶束大小分布 | 第49页 |
| 4.3.4 色素和表面活性剂吸附的动力学曲线 | 第49页 |
| 4.3.5 色素的等温吸附 | 第49-50页 |
| 4.3.6 色素的解吸和树脂的重复利用 | 第50页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第50-64页 |
| 4.4.1 有机溶剂萃取分离红曲色素 | 第50-51页 |
| 4.4.2 树脂对发酵液和COSP的选择性吸附 | 第51-55页 |
| 4.4.3 胶束的电镜观察结果以及其大小分布 | 第55-57页 |
| 4.4.4 吸附动力学 | 第57-60页 |
| 4.4.5 色素的等温吸附 | 第60-62页 |
| 4.4.6 红曲色素的洗脱和树脂重复利用 | 第62-64页 |
| 4.5 本章小结 | 第64-66页 |
| 结论与展望 | 第66-68页 |
| 附表 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-79页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第79-81页 |
| 致谢 | 第81-83页 |
| 附件 | 第83页 |
