| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第一章 综述 | 第9-18页 |
| 1.1 血管发育研究进展 | 第9-15页 |
| 1.1.1 血管发育的主要过程 | 第9-11页 |
| 1.1.2 血管发育过程中涉及的关键因子及信号通路 | 第11-15页 |
| 1.2 GGPPS基因研究进展 | 第15-18页 |
| 第二章 内皮特异性敲除GGPPS对小鼠的影响 | 第18-33页 |
| 2.1 实验材料与方法 | 第18-23页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第18页 |
| 2.1.2 敲除小鼠的获得 | 第18-19页 |
| 2.1.3 基因型鉴定 | 第19-20页 |
| 2.1.4 胚胎收集 | 第20页 |
| 2.1.5 RNA提取、反转录PCR及实时荧光定量PCR | 第20-21页 |
| 2.1.6 全胚免疫荧光 | 第21页 |
| 2.1.7 激光共聚焦显微镜观察 | 第21页 |
| 2.1.8 石蜡切片 | 第21-22页 |
| 2.1.10 组织切片免疫荧光 | 第22-23页 |
| 2.2 实验结果 | 第23-29页 |
| 2.2.1 基因型鉴定结果 | 第23页 |
| 2.2.2 GGPPS内皮细胞特异性敲除小鼠胚胎致死 | 第23-24页 |
| 2.2.3 GGPPS敲除效率验证 | 第24-25页 |
| 2.2.4 GGPPS内皮细胞特异性敲除小鼠胚胎血管网络损伤 | 第25-27页 |
| 2.2.5 GGPPS内皮细胞特异性敲除小鼠卵黄膜血管生成异常 | 第27-29页 |
| 2.3 讨论 | 第29-33页 |
| 第三章 GGPPS缺失对体外培养内皮细胞的影响 | 第33-40页 |
| 3.1 实验材料与方法 | 第33-36页 |
| 3.1.1 实验试剂 | 第33页 |
| 3.1.2 细胞培养 | 第33页 |
| 3.1.3 细胞转染 | 第33-34页 |
| 3.1.4 RNA提取、反转录PCR及实时荧光定量PCR | 第34页 |
| 3.1.5 蛋白提取、免疫印迹 | 第34-35页 |
| 3.1.6 免疫荧光 | 第35页 |
| 3.1.7 MTT | 第35页 |
| 3.1.8 细胞划痕修复 | 第35页 |
| 3.1.9 统计学处理 | 第35-36页 |
| 3.2 实验结果 | 第36-38页 |
| 3.2.1 HUVEC细胞内siGGPPS干扰效率检测 | 第36页 |
| 3.2.2 GGPPS缺失抑制HUVEC细胞的增殖并降低其细胞活力 | 第36-37页 |
| 3.2.3 GGPPS缺失对HUVEC细胞的迁移能力无明显影响 | 第37-38页 |
| 3.3 讨论 | 第38-40页 |
| 全文总结 | 第40-41页 |
| 附录 | 第41-44页 |
| 附录一 主要实验仪器 | 第41-42页 |
| 附录二 主要试剂配方 | 第42-43页 |
| 附录三 主要实验材料 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-50页 |
| 在读期间发表的学术论文及研究成果 | 第50-51页 |
| 致谢 | 第51页 |
