| 摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-10页 |
| 缩略词表 | 第11-13页 |
| 前言 | 第13-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-39页 |
| 1 盐胁迫对植物的伤害及大豆耐盐性研究进展 | 第15-21页 |
| 1.1 土壤盐渍化和次生盐渍化 | 第15-16页 |
| 1.2 盐胁迫对植物的危害 | 第16-17页 |
| 1.3 大豆耐盐机理 | 第17-19页 |
| 1.4 提高大豆耐盐性的可能途径 | 第19-21页 |
| 2 植物脯氨酸合成酶基因(P5CS)研究进展 | 第21-28页 |
| 2.1 脯氨酸在植物逆境胁迫中的作用 | 第21-22页 |
| 2.2 脯氨酸在生物体内的代谢 | 第22-25页 |
| 2.3 脯氨酸合成酶基因克隆及表达特性 | 第25-27页 |
| 2.4 脯氨酸合成酶基因工程研究及其对作物抗逆性的改良 | 第27-28页 |
| 3 大豆遗传转化研究进展 | 第28-39页 |
| 3.1 大豆遗传转化方法 | 第29-32页 |
| 3.2 大豆遗传转化的受体系统 | 第32-35页 |
| 3.3 农杆菌介导的大豆转基因的影响因素 | 第35-37页 |
| 3.4 转基因大豆的应用现状及展望 | 第37-39页 |
| 第二章 南瓜△~1-吡咯啉-5-羧酸合成酶基因(CmP5CS)克隆与生物信息学分析 | 第39-63页 |
| 摘要 | 第39-40页 |
| 1 材料与方法 | 第40-48页 |
| 1.1 试验材料 | 第40-41页 |
| 1.2 试验方法 | 第41-48页 |
| 2 结果与分析 | 第48-59页 |
| 2.1 南瓜叶片总RNA提取 | 第48页 |
| 2.2 南瓜P5CS基因的编码区cDNA克隆 | 第48-50页 |
| 2.3 南瓜CmP5CS基因生物信息学分析 | 第50-59页 |
| 3 讨论 | 第59-63页 |
| 第三章 CmP5CS植物表达载体构建 | 第63-81页 |
| 摘要 | 第63页 |
| 1 材料与方法 | 第63-71页 |
| 1.1 试验材料 | 第63-64页 |
| 1.2 试验方法 | 第64-71页 |
| 2 结果与分析 | 第71-77页 |
| 2.1 对目标位点突变 | 第71-73页 |
| 2.2 中间载体pMD19-CmP5CS_m酶切验证 | 第73-74页 |
| 2.3 植物表达载体pCAMBIA3301-CmP5CS_m的PCR及酶切检测 | 第74-76页 |
| 2.4 含有pCAMBIA3301-CmP5CS_m的农杆菌工程菌鉴定 | 第76-77页 |
| 3 讨论 | 第77-81页 |
| 第四章 菜用大豆离体子叶节不定芽高效再生体系的建立 | 第81-91页 |
| 摘要 | 第81-82页 |
| 1 材料与方法 | 第82-83页 |
| 1.1 试验材料 | 第82页 |
| 1.2 试验方法 | 第82-83页 |
| 2 结果与分析 | 第83-88页 |
| 2.1 不同浓度TDZ和NAA组合对不定芽再生的影响 | 第83-85页 |
| 2.2 基本培养基、接种方法对不定芽诱导的影响 | 第85-87页 |
| 2.3 基因型对不定芽再生的影响 | 第87-88页 |
| 3 讨论 | 第88-91页 |
| 第五章 CmP5CS基因遗传转化菜用大豆 | 第91-113页 |
| 摘要 | 第91-92页 |
| 1 材料与方法 | 第92-99页 |
| 1.1 试验材料 | 第92-93页 |
| 1.2 试验方法 | 第93-99页 |
| 2 结果与分析 | 第99-110页 |
| 2.1 不同基因型对农杆菌侵染的敏感性差异 | 第99-100页 |
| 2.2 共培养阶段三因素对转化效率的影响 | 第100-102页 |
| 2.3 Bialaphos(双丙胺磷)选择压的确定 | 第102-104页 |
| 2.4 转化体的筛选和转基因植株的再生 | 第104-106页 |
| 2.5 转基因植株的GUS组织化学染色鉴定 | 第106-107页 |
| 2.6 菜用大豆转基因植株的分子检测和除草剂抗性检测 | 第107-110页 |
| 3 讨论 | 第110-113页 |
| 全文讨论 | 第113-117页 |
| 全文结论 | 第117-119页 |
| 创新之处 | 第119-121页 |
| 参考文献 | 第121-139页 |
| 附图1 | 第139-140页 |
| 附图2 | 第140-141页 |
| 攻读博士学位期间发表学术论文 | 第141-143页 |
| 致谢 | 第143页 |
