摘要 | 第4-6页 |
ABSTRACT | 第6-7页 |
第一章 前言 | 第11-18页 |
1.1 手性环氧叠氮丙烷化合物的应用 | 第11-12页 |
1.2 环氧化物水解酶概述 | 第12-16页 |
1.2.1 环氧化物水解的催化机理 | 第13-14页 |
1.2.2 环氧化物水解酶的经典动力学拆分 | 第14-16页 |
1.2.3 环氧化物水解酶的来源 | 第16页 |
1.3 本课题的研究内容 | 第16-18页 |
第二章 产环氧化物水解酶菌的筛选,鉴定及底物环氧叠氮丙烷的合成优化 | 第18-34页 |
2.1 材料与方法 | 第18-23页 |
2.1.1 主要仪器 | 第18-19页 |
2.1.2 主要试剂 | 第19-20页 |
2.1.3 培养基 | 第20页 |
2.1.4 试剂的配制 | 第20-21页 |
2.1.5 菌种来源 | 第21页 |
2.1.6 环氧叠氮丙烷的化学法合成 | 第21页 |
2.1.7 环氧叠氮丙烷的化学法水解 | 第21-22页 |
2.1.8 菌种的筛选及分离 | 第22-23页 |
2.1.9 对映选择性的表达 | 第23页 |
2.1.10 菌种鉴定 | 第23页 |
2.2 结果和讨论 | 第23-32页 |
2.2.1 筛选结果 | 第23-25页 |
2.2.2 菌种的纯化,鉴定以及菌落形态观察 | 第25-28页 |
2.2.3 环氧叠氮丙烷的合成优化 | 第28-32页 |
2.2.3.1 原料投料比对产率的影响 | 第28-29页 |
2.2.3.2 溶剂种类与溶剂量对产率的影响 | 第29-30页 |
2.2.3.3 酸的种类及量对产率的影响 | 第30-32页 |
2.2.3.4 反应时间对产率的影响 | 第32页 |
2.3 本章小结 | 第32-34页 |
第三章 ASPERGILLUS NIGER ZJUTZQ208发酵条件优化 | 第34-51页 |
3.1 材料与方法 | 第34-37页 |
3.1.1 主要仪器 | 第34页 |
3.1.2 主要试剂 | 第34-35页 |
3.1.3 菌种 | 第35页 |
3.1.4 培养基 | 第35页 |
3.1.5 菌体制备和整细胞转化 | 第35-36页 |
3.1.6 生物量测定 | 第36页 |
3.1.7 酶活的测定 | 第36页 |
3.1.8 响应面实验设计 | 第36-37页 |
3.2 结果与讨论 | 第37-49页 |
3.2.1 不同种类碳源对菌体生长和产酶的影响 | 第37-38页 |
3.2.2 不同种类氮源对菌体生长和产酶的影响 | 第38-40页 |
3.2.3 不同的金属离子对菌体生长和产酶的影响 | 第40-41页 |
3.2.4 不同的温度对菌体生长和产酶的影响 | 第41-42页 |
3.2.5 初始pH对菌体生长和产酶的影响 | 第42-43页 |
3.2.6 不同的发酵时间对菌体生长和产酶的影响 | 第43-44页 |
3.2.7 底物诱导对菌体生长和产酶的影响 | 第44-45页 |
3.2.8 响应面试验结果及验证 | 第45-49页 |
3.3 本章小结 | 第49-51页 |
第四章 微生物环氧化物水解酶对底物拆分条件的研究及利奈唑胺的制备 | 第51-63页 |
4.1 材料与方法 | 第51-55页 |
4.1.1 主要仪器 | 第51页 |
4.1.2 主要试剂 | 第51页 |
4.1.3 菌种 | 第51页 |
4.1.4 培养基 | 第51-52页 |
4.1.5 菌体制备 | 第52页 |
4.1.6 整细胞转化试验及对映选择性的检测 | 第52页 |
4.1.7 环氧叠氮丙烷类似物的化学法合成 | 第52-55页 |
4.2 结果与讨论 | 第55-62页 |
4.2.1 不同pH的缓冲液对底物拆分的影响 | 第55页 |
4.2.2 不同的助溶剂对底物拆分的影响 | 第55-56页 |
4.2.3 湿菌体与底物的比例对底物拆分的影响 | 第56-57页 |
4.2.4 转化温度对底物拆分的影响 | 第57-58页 |
4.2.5 转化时间对底物拆分的影响 | 第58-59页 |
4.2.6 底物特异性研究 | 第59-61页 |
4.2.7 利奈唑胺的合成 | 第61-62页 |
4.3 本章小结 | 第62-63页 |
第五章 总结与展望 | 第63-65页 |
5.1 总结 | 第63-64页 |
5.2 展望 | 第64-65页 |
附图 | 第65-67页 |
参考文献 | 第67-71页 |
致谢 | 第71-72页 |
攻读硕士学位期间发表的论文 | 第72页 |