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促进轴突生长转录因子的筛选

缩略语表第6-9页
中文摘要第9-11页
ABSTRACT第11-12页
前言第13-14页
文献回顾第14-31页
第一部分 克隆及表达载体的构建第31-41页
    1 实验材料第31-34页
        1.1 主要试剂和缓冲液第31-33页
        1.2 实验仪器、耗材第33-34页
    2 实验方法第34-36页
        2.1 克隆及表达载体的构建第34-36页
        2.2 表达载体pCAGSJ-EGFP的构建及鉴定第36页
    3 结果第36-39页
        3.1 通过改造pCAGGS得到表达载体pCAGSJ第36-39页
        3.2 表达载体pCAGSJ可以稳定高效的表达外源基因第39页
    4 讨论第39-41页
第二部分 转录因子编码区序列的克隆及转录因子表达载体的构建第41-57页
    1 实验材料第41-46页
        1.1 实验动物第41页
        1.2 主要试剂和缓冲液第41-42页
        1.3 引物序列第42-45页
        1.4 主要仪器、耗材第45-46页
    2 实验方法第46-52页
        2.1 总RNA的提取第46-47页
        2.2 RNA的反转合成cDNA第47页
        2.3 常规PCR扩增转录因子编码区序列第47-48页
        2.4 转录因子编码区序列的回收第48-51页
        2.5 转录因子编码区的测序第51-52页
    3 结果第52-55页
        3.1 提取各组织器官的RNA第52页
        3.2 通过常规PCR扩增获得38种转录因子编码区序列第52-55页
        3.3 得到38种转录因子的表达载体第55页
    4 讨论第55-57页
第三部分 单个转录因子对PC12细胞突起生长作用的评估第57-75页
    1 实验材料第57-59页
        1.1 细胞系第57页
        1.2 主要试剂和缓冲液第57-58页
        1.3 实验仪器和耗材第58-59页
    2 实验方法第59-62页
        2.1 PC12细胞系的复苏、培养、传代和冻存第59-60页
        2.2 无内毒素转录因子的提取第60-61页
        2.3 转录因子转染到细胞第61-62页
        2.4 对转录因子作用后不同时间点的细胞采集图像和定量分析第62页
    3 结果第62-73页
        3.1 多种转录因子可促进PC12细胞突起的生长第62-73页
        3.2 筛选促进突起生长效果最为显著的10种转录因子作为后续工作的研究重点第73页
    4 讨论第73-75页
第四部分 多种转录因子联合转染对PC12细胞突起生长作用的评估第75-82页
    1 实验材料第75-76页
        1.1 细胞系第75页
        1.2 主要试剂和缓冲液第75页
        1.3 实验仪器和耗材第75-76页
    2 实验方法第76-77页
        2.1 PC12细胞系的复苏、培养、传代和冻存第76页
        2.2 转录因子的联合转染第76页
        2.3 联合转染后细胞突起长度分析第76-77页
    3 结果第77-80页
        3.1 三种转录因子联合转染可以更好的促进PC12细胞突起的生长第77-78页
        3.2 在CREB、Stat3、p50、Klf4四种转录因子中CREB+Stat3为“最优组合”,且N-1 策略在后期实验中可行第78-80页
    4 讨论第80-82页
第五部分 慢病毒包装及感染原代神经元对其轴突生长作用的评估第82-88页
    1 实验材料第82-84页
        1.1 细胞系第82页
        1.2 主要试剂和缓冲液第82-83页
        1.3 实验仪器和耗材第83页
        1.4 构建病毒载体所需引物第83-84页
        1.5 慢病毒包装第84页
    2 实验方法第84-86页
        2.1 细胞的复苏、培养、传代和冻存第84-85页
        2.2 慢病毒载体的构建第85-86页
    3 结果第86页
    4 讨论第86-88页
小结第88-90页
参考文献第90-98页
个人简历和研究成果第98-99页
致谢第99页

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