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两株新种微生物的多相分类学研究及Rhodococcus FDL2生产生物表面活性剂的研究

学位论文数据集第3-4页
摘要第4-6页
ABSTRACT第6-8页
第一章 绪论第17-27页
    1.1 环境微生物多样性研究进展概述第17-18页
        1.1.1 极端环境微生物研究概况第17-18页
    1.2 微生物多相分类学概述第18-19页
    1.3 祁连山冻土区概况第19-21页
        1.3.1 祁连山冻土区简介第19-20页
        1.3.2 祁连山冻土区极端微生物研究进展第20-21页
    1.4 赤水河概况第21-23页
        1.4.1 赤水河简介第21-22页
        1.4.2 赤水河微生物研究进展第22-23页
    1.5 生物表面活性剂第23-24页
    1.6 本课题的研究目的及意义第24-27页
第二章 祁连山冻土区新种微生物Sphingomonas qilianensis的多相分类学研究第27-57页
    2.1 引言第27页
    2.2 研究材料第27-30页
        2.2.1 实验仪器第27页
        2.2.2 实验试剂的配制第27-29页
        2.2.3 培养基的配制第29页
        2.2.4 其他研究材料第29-30页
    2.3 实验方法第30-41页
        2.3.1 祁连山冻土区微生物X1~T的分离第30页
        2.3.2 新种微生物的初步确定第30-31页
        2.3.3 16S rRNA基因克隆第31-33页
        2.3.4 新种微生物系统发育树的建立第33-34页
        2.3.5 近缘种标准株的选择与购买第34页
        2.3.6 新种微生物的表型特征分析第34-36页
            2.3.6.1 形态学特征分析第34页
            2.3.6.2 生理特征分析第34-35页
            2.3.6.3 抗生素敏感性实验第35-36页
            2.3.6.4 生理生化分析第36页
        2.3.7 新种微生物的化学特征分析第36-41页
            2.3.7.1 G+C mol%含量分析第37页
            2.3.7.2 极性脂分析第37-40页
            2.3.7.3 呼吸醌的测定第40-41页
            2.3.7.4 脂肪酸的检测第41页
    2.4 结果与讨论第41-54页
        2.4.1 X1~T的16S rRNA测序结果第41-42页
        2.4.2 X1~T的系统发育树分析结果第42-46页
        2.4.3 X1~T表型特征分析结果第46-51页
        2.4.4 X1~T化学特征分析结果第51-54页
            2.4.4.1 G+G mol%含量分析结果第51页
            2.4.4.2 极性脂分析结果第51-53页
            2.4.4.3 呼吸醌鉴定结果第53页
            2.4.4.4 脂肪酸分析结果第53-54页
        2.4.5 菌株X1~T的保藏及命名第54页
    2.5 讨论与总结第54-57页
第三章 赤水河新种微生物Sphingorhabdus maotaiensis的多相分类学研究第57-79页
    3.1 引言第57页
    3.2 研究材料第57-58页
    3.3 实验方法第58-61页
        3.3.1 赤水河微生物T5~T的分离第58页
        3.3.2 新种微生物的初步确定第58页
        3.3.3 16S rRNA的基因克隆第58页
        3.3.4 新种微生物的序列分析及系统发育树的建立第58-59页
        3.3.5 近缘种标准株的选择与购买第59页
        3.3.6 新种微生物的表型特征分析第59-60页
            3.3.6.1 形态学特征分析第59页
            3.3.6.2 生理特征分析第59-60页
        3.3.7 新种微生物的化学特征分析第60-61页
    3.4 结果与讨论第61-75页
        3.4.1 T5~T的16S rRNA测序结果第61页
        3.4.2 T5~T的序列分析及系统发育树分析结果第61-66页
        3.4.3 T5~T表型特征分析结果第66-71页
        3.4.4 T5~T化学特征分析结果第71-75页
            3.4.4.1 G+G mol%含量分析结果第71页
            3.4.4.2 极性脂分析结果第71-73页
            3.4.4.3 呼吸醌鉴定结果第73-74页
            3.4.4.4 脂肪酸分析结果第74-75页
            3.4.4.5 多胺分析结果第75页
        3.4.5 菌株T5~T的保藏及命名第75页
    3.5 讨论与总结第75-79页
第四章 Rhodococcus FDL2生产生物表面活性剂的研究第79-101页
    4.1 引言第79页
    4.2 研究材料第79页
    4.3 研究方法第79-88页
        4.3.1 基因提取第79-80页
        4.3.2 基因克隆第80-81页
        4.3.3 16S rRNA基因序列的测定第81-82页
        4.3.4 16S rRNA基因序列分析及系统树建立第82页
        4.3.5 DCW测定和糖脂鉴定第82-84页
        4.3.6 菌株FDL2培养条件的优化第84-86页
            4.3.6.1 培养温度的影响第84页
            4.3.6.2 不同烷烃及橄榄油的影响第84-85页
            4.3.6.3 培养基营养物成分的影响第85-86页
            4.3.6.4 培养基无机盐成分的影响第86页
        4.3.7 菌株FDL2的生物表面活性剂的分离与精制第86-87页
        4.3.8 界面张力的测定第87-88页
    4.4 结果与讨论第88-99页
        4.4.1 基因组提取结果第88页
        4.4.2 基因克隆结果第88-89页
        4.4.3 16S rRNA基因序列分析和系统树结果第89-92页
        4.4.4 菌株FDL2的DCW测定和糖脂分析结果第92页
        4.4.5 菌株FDL2最适培养条件的测定结果第92-96页
            4.4.5.1 最适温度测定结果第92-93页
            4.4.5.2 不同烷烃及橄榄油培养基的测定结果第93-94页
            4.4.5.3 最适营养物培养基的测定结果第94-95页
            4.4.5.4 无机盐培养基测定结果第95-96页
        4.4.6 菌株FDL2的生物表面活性剂的分离纯化结果第96-98页
        4.4.7 表面张力的测定结果第98-99页
    4.5 总结与讨论第99-101页
第五章 结论与展望第101-103页
    5.1 结论第101-102页
    5.2 展望第102-103页
参考文献第103-107页
致谢第107-109页
研究成果及发表的学术论文第109-111页
作者及导师简介第111-113页
附件第113-114页

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