| 学位论文数据集 | 第3-4页 |
| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 第一章 绪论 | 第17-27页 |
| 1.1 环境微生物多样性研究进展概述 | 第17-18页 |
| 1.1.1 极端环境微生物研究概况 | 第17-18页 |
| 1.2 微生物多相分类学概述 | 第18-19页 |
| 1.3 祁连山冻土区概况 | 第19-21页 |
| 1.3.1 祁连山冻土区简介 | 第19-20页 |
| 1.3.2 祁连山冻土区极端微生物研究进展 | 第20-21页 |
| 1.4 赤水河概况 | 第21-23页 |
| 1.4.1 赤水河简介 | 第21-22页 |
| 1.4.2 赤水河微生物研究进展 | 第22-23页 |
| 1.5 生物表面活性剂 | 第23-24页 |
| 1.6 本课题的研究目的及意义 | 第24-27页 |
| 第二章 祁连山冻土区新种微生物Sphingomonas qilianensis的多相分类学研究 | 第27-57页 |
| 2.1 引言 | 第27页 |
| 2.2 研究材料 | 第27-30页 |
| 2.2.1 实验仪器 | 第27页 |
| 2.2.2 实验试剂的配制 | 第27-29页 |
| 2.2.3 培养基的配制 | 第29页 |
| 2.2.4 其他研究材料 | 第29-30页 |
| 2.3 实验方法 | 第30-41页 |
| 2.3.1 祁连山冻土区微生物X1~T的分离 | 第30页 |
| 2.3.2 新种微生物的初步确定 | 第30-31页 |
| 2.3.3 16S rRNA基因克隆 | 第31-33页 |
| 2.3.4 新种微生物系统发育树的建立 | 第33-34页 |
| 2.3.5 近缘种标准株的选择与购买 | 第34页 |
| 2.3.6 新种微生物的表型特征分析 | 第34-36页 |
| 2.3.6.1 形态学特征分析 | 第34页 |
| 2.3.6.2 生理特征分析 | 第34-35页 |
| 2.3.6.3 抗生素敏感性实验 | 第35-36页 |
| 2.3.6.4 生理生化分析 | 第36页 |
| 2.3.7 新种微生物的化学特征分析 | 第36-41页 |
| 2.3.7.1 G+C mol%含量分析 | 第37页 |
| 2.3.7.2 极性脂分析 | 第37-40页 |
| 2.3.7.3 呼吸醌的测定 | 第40-41页 |
| 2.3.7.4 脂肪酸的检测 | 第41页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第41-54页 |
| 2.4.1 X1~T的16S rRNA测序结果 | 第41-42页 |
| 2.4.2 X1~T的系统发育树分析结果 | 第42-46页 |
| 2.4.3 X1~T表型特征分析结果 | 第46-51页 |
| 2.4.4 X1~T化学特征分析结果 | 第51-54页 |
| 2.4.4.1 G+G mol%含量分析结果 | 第51页 |
| 2.4.4.2 极性脂分析结果 | 第51-53页 |
| 2.4.4.3 呼吸醌鉴定结果 | 第53页 |
| 2.4.4.4 脂肪酸分析结果 | 第53-54页 |
| 2.4.5 菌株X1~T的保藏及命名 | 第54页 |
| 2.5 讨论与总结 | 第54-57页 |
| 第三章 赤水河新种微生物Sphingorhabdus maotaiensis的多相分类学研究 | 第57-79页 |
| 3.1 引言 | 第57页 |
| 3.2 研究材料 | 第57-58页 |
| 3.3 实验方法 | 第58-61页 |
| 3.3.1 赤水河微生物T5~T的分离 | 第58页 |
| 3.3.2 新种微生物的初步确定 | 第58页 |
| 3.3.3 16S rRNA的基因克隆 | 第58页 |
| 3.3.4 新种微生物的序列分析及系统发育树的建立 | 第58-59页 |
| 3.3.5 近缘种标准株的选择与购买 | 第59页 |
| 3.3.6 新种微生物的表型特征分析 | 第59-60页 |
| 3.3.6.1 形态学特征分析 | 第59页 |
| 3.3.6.2 生理特征分析 | 第59-60页 |
| 3.3.7 新种微生物的化学特征分析 | 第60-61页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第61-75页 |
| 3.4.1 T5~T的16S rRNA测序结果 | 第61页 |
| 3.4.2 T5~T的序列分析及系统发育树分析结果 | 第61-66页 |
| 3.4.3 T5~T表型特征分析结果 | 第66-71页 |
| 3.4.4 T5~T化学特征分析结果 | 第71-75页 |
| 3.4.4.1 G+G mol%含量分析结果 | 第71页 |
| 3.4.4.2 极性脂分析结果 | 第71-73页 |
| 3.4.4.3 呼吸醌鉴定结果 | 第73-74页 |
| 3.4.4.4 脂肪酸分析结果 | 第74-75页 |
| 3.4.4.5 多胺分析结果 | 第75页 |
| 3.4.5 菌株T5~T的保藏及命名 | 第75页 |
| 3.5 讨论与总结 | 第75-79页 |
| 第四章 Rhodococcus FDL2生产生物表面活性剂的研究 | 第79-101页 |
| 4.1 引言 | 第79页 |
| 4.2 研究材料 | 第79页 |
| 4.3 研究方法 | 第79-88页 |
| 4.3.1 基因提取 | 第79-80页 |
| 4.3.2 基因克隆 | 第80-81页 |
| 4.3.3 16S rRNA基因序列的测定 | 第81-82页 |
| 4.3.4 16S rRNA基因序列分析及系统树建立 | 第82页 |
| 4.3.5 DCW测定和糖脂鉴定 | 第82-84页 |
| 4.3.6 菌株FDL2培养条件的优化 | 第84-86页 |
| 4.3.6.1 培养温度的影响 | 第84页 |
| 4.3.6.2 不同烷烃及橄榄油的影响 | 第84-85页 |
| 4.3.6.3 培养基营养物成分的影响 | 第85-86页 |
| 4.3.6.4 培养基无机盐成分的影响 | 第86页 |
| 4.3.7 菌株FDL2的生物表面活性剂的分离与精制 | 第86-87页 |
| 4.3.8 界面张力的测定 | 第87-88页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第88-99页 |
| 4.4.1 基因组提取结果 | 第88页 |
| 4.4.2 基因克隆结果 | 第88-89页 |
| 4.4.3 16S rRNA基因序列分析和系统树结果 | 第89-92页 |
| 4.4.4 菌株FDL2的DCW测定和糖脂分析结果 | 第92页 |
| 4.4.5 菌株FDL2最适培养条件的测定结果 | 第92-96页 |
| 4.4.5.1 最适温度测定结果 | 第92-93页 |
| 4.4.5.2 不同烷烃及橄榄油培养基的测定结果 | 第93-94页 |
| 4.4.5.3 最适营养物培养基的测定结果 | 第94-95页 |
| 4.4.5.4 无机盐培养基测定结果 | 第95-96页 |
| 4.4.6 菌株FDL2的生物表面活性剂的分离纯化结果 | 第96-98页 |
| 4.4.7 表面张力的测定结果 | 第98-99页 |
| 4.5 总结与讨论 | 第99-101页 |
| 第五章 结论与展望 | 第101-103页 |
| 5.1 结论 | 第101-102页 |
| 5.2 展望 | 第102-103页 |
| 参考文献 | 第103-107页 |
| 致谢 | 第107-109页 |
| 研究成果及发表的学术论文 | 第109-111页 |
| 作者及导师简介 | 第111-113页 |
| 附件 | 第113-114页 |
