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SI-eATRP和自组装技术在聚醚砜膜表面构筑功能链段及其生物相容性研究

摘要第8-9页
Abstract第9-10页
第一章 绪论第11-21页
    1.1 引言第11-14页
        1.1.1 生物材料第11-12页
        1.1.2 生物相容性第12-14页
            1.1.2.1 血液相容性第12-13页
            1.1.2.2 细胞相容性第13页
            1.1.2.3 组织相容性第13-14页
    1.2 聚醚砜材料及其改性第14-18页
        1.2.1 聚醚砜第14-15页
        1.2.2 聚醚砜材料的改性方法第15-18页
            1.2.2.1 本体改性第15页
            1.2.2.2 共混改性第15-16页
            1.2.2.3 表面改性第16-18页
                1.2.2.3.1 表面涂覆第16页
                1.2.2.3.2 光化学处理第16-17页
                1.2.2.3.3 等离子体改性第17页
                1.2.2.3.4 表面接枝改性第17-18页
    1.3 电化学诱导的原子转移自由基聚合(SI-eATRP)第18-19页
    1.4 课题的提出及创新性第19-21页
        1.4.1 课题的提出第19-20页
        1.4.2 课题的特色与创新性第20-21页
第二章 SI-eATRP构筑离子型聚醚砜膜功能表面第21-30页
    2.1 前言第21页
    2.2 实验部分第21-24页
        2.2.1 化学试剂与实验仪器第21-22页
            2.2.1.1 主要原料第21-22页
            2.2.1.2 主要实验仪器设备第22页
        2.2.2 聚醚砜膜的制备第22-23页
        2.2.3 引发剂的固定第23页
        2.2.4 SI-eATRP接枝对苯乙烯磺酸钠第23页
        2.2.5 改性膜的表征第23-24页
        2.2.6 改性膜的纯水通量性能第24页
    2.3 结果与讨论第24-29页
        2.3.1 还原电位的确定第24页
        2.3.2 改性膜表面元素分析第24-26页
        2.3.3 改性膜的表面形貌第26-27页
        2.3.4 水接触角第27-28页
        2.3.5 纯水通量第28-29页
    2.4 小结第29-30页
第三章 SI-eATRP构筑多糖类嵌段共聚物表面第30-40页
    3.1 引言第30页
    3.2 实验部分第30-34页
        3.2.1 化学试剂与实验仪器第30-31页
            3.2.1.1 主要原料第30-31页
            3.2.1.2 主要实验仪器设备第31页
        3.2.2 AAG单体和 β-CD-AA单体的合成第31-32页
        3.2.3 引发剂的固定第32页
        3.2.4 SI-eATRP接枝多糖类嵌段共聚物第32-33页
        3.2.5 改性膜的表征第33页
        3.2.6 改性PES膜的通量及抗污性能表征第33-34页
    3.3 结果与讨论第34-39页
        3.3.1 改性膜的表面形貌第34-35页
        3.3.2 改性膜表面元素分析第35-36页
        3.3.3 水接触角第36-37页
        3.3.4 改性PES膜的通量及抗污性能第37-39页
    3.4 小结第39-40页
第四章 利用SI-eATRP和自组装技术联用制备多功能性表面聚醚砜膜及生物相容性研究第40-65页
    4.1 引言第40-41页
    4.2 实验部分第41-47页
        4.2.1 化学试剂与实验仪器第41-42页
            4.2.1.1 主要原料第41-42页
            4.2.1.2 主要实验仪器设备第42页
        4.2.2 引发剂的固定第42页
        4.2.3 AAG单体和 β-CD-AA单体的合成第42页
        4.2.4 SI-eATRP接枝 β-CD-AA单体第42-44页
        4.2.5 RAFT方法合成P(VP-co-t-BuAM)、P(SSNa-co-t-Bu AM)和P(AAG-co-t-Bu AM)第44页
        4.2.6 聚合物溶液的制备第44页
        4.2.7 自组装膜的制备第44-45页
        4.2.8 结构表征第45页
        4.2.9 水接触角测试第45页
        4.2.10 血液相容性第45-46页
            4.2.10.1 血小板粘附第45页
            4.2.10.2 凝血时间第45-46页
            4.2.10.3 凝血酶-抗凝血酶复合物、补体激活和血小板第4因子第46页
        4.2.11 细胞相容性第46-47页
            4.2.11.1 细胞在膜上的形态第46页
            4.2.11.2 成纤维细胞增殖:CCK-8 测定第46-47页
    4.3 结果与讨论第47-63页
        4.3.1 AAG单体和 β-CD-AA单体的表征第47-48页
        4.3.2 P(VP-co-t-BuAM)、P(SSNa-co-t-BuAM)和P(AAG-co-t-Bu AM)的表征第48-50页
        4.3.3 M-PVP膜、M-PSSNa膜和M-PAAG膜的结构表征第50-52页
        4.3.4 M-PVP膜、M-PSSNa膜和M-PAAG膜的表面形貌第52-54页
        4.3.5 M-PVP膜、M-PSSNa膜和M-PAAG膜的亲水性第54页
        4.3.6 SI-eATRP电化学调控的影响因素第54-57页
        4.3.7 M-PSA1膜、M- PSA2膜和M- PSA3的结构表征第57-58页
        4.3.8 水接触角第58页
        4.3.9 血液相容性第58-61页
            4.3.9.1 改性膜的血小板黏附第58-59页
            4.3.9.2 改性膜的凝血时间第59-60页
            4.3.9.3 TAT、C3a、C5a及PF4第60-61页
        4.3.10 改性膜的细胞相容性第61-63页
            4.3.10.1 细胞形态第61-62页
            4.3.10.2 成纤细胞增殖:CCK-8第62-63页
    4.4 小结第63-65页
第五章 全文总结以及工作展望第65-67页
    5.1 工作总结第65-66页
    5.2 工作展望第66-67页
参考文献第67-72页
致谢第72-73页
附录A 攻读硕士学位期间发表或接收的论文第73页

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