摘要 | 第4-7页 |
ABSTRACT | 第7-10页 |
第一章 引言 | 第13-23页 |
1.1 海洋酸化现状 | 第13页 |
1.2 海洋酸化对海洋鱼类的影响 | 第13-16页 |
1.2.1 海洋酸化对鱼类嗅觉的影响 | 第13-14页 |
1.2.2 海洋酸化对鱼类耳石及其听觉的影响 | 第14-15页 |
1.2.3 海洋中CO_2对鱼类视觉的影响 | 第15页 |
1.2.4 海洋中CO_2对海洋鱼类早期发育的影响 | 第15-16页 |
1.3 海水青鳉鱼生物学特征和饲养管理 | 第16-18页 |
1.3.1 海水青鳉鱼的生物学特点 | 第16-17页 |
1.3.2 青鳉鱼的饲养和管理 | 第17页 |
1.3.3 幼鱼培养 | 第17-18页 |
1.4 鱼类性别决定基因及其研究进展 | 第18-19页 |
1.4.1 性染色体的研究现状 | 第18页 |
1.4.2 鱼类的性染色体研究现状 | 第18-19页 |
1.5 温度影响性别的研究进展 | 第19-20页 |
1.6 海水青鳉鱼性别决定基因的研究现状 | 第20-22页 |
1.6.1 FOXL3基因研究概况 | 第20-21页 |
1.6.2 Sry基因的研究现状 | 第21页 |
1.6.3 DMY基因的研究现状 | 第21-22页 |
1.7 c-fos蛋白 | 第22页 |
1.8 本研究的目的及意义 | 第22-23页 |
第二章 海洋酸化对青鳉鱼脑部c-fos表达和成鱼受精率的影响 | 第23-36页 |
2.1 材料与方法 | 第23-25页 |
2.1.1 实验材料 | 第23-24页 |
2.1.2 主要试剂与仪器 | 第24-25页 |
2.2 方法 | 第25-28页 |
2.2.1 海水的制备 | 第25-26页 |
2.2.2 组织固定及包埋 | 第26页 |
2.2.3 组织切片 | 第26页 |
2.2.4 免疫组织化学 | 第26-27页 |
2.2.5 鱼脑中c-fos蛋白的提取 | 第27页 |
2.2.6 SDS-PAGE检测 | 第27页 |
2.2.7 Western blot检测 | 第27-28页 |
2.3 结果与分析 | 第28-34页 |
2.3.1 水质常规检测 | 第28-29页 |
2.3.2 海水酸化对成年青鳉鱼成鱼脑中c-fos蛋白表达的影响 | 第29页 |
2.3.3 海水酸化对青鳉鱼不同脑区c-fos表达的影响 | 第29-32页 |
2.3.4 Western blot检测海水酸化对青鳉鱼全脑c-fos表达量的影响 | 第32-33页 |
2.3.5 海水酸化对海水青鳉鱼受精率的影响 | 第33-34页 |
2.4 讨论 | 第34-36页 |
第三章 海水酸化对青鳉鱼卵发育的影响 | 第36-41页 |
3.1 材料试剂 | 第36页 |
3.1.1 实验材料与试剂 | 第36页 |
3.2 实验方法 | 第36-38页 |
3.3 结果与分析 | 第38-40页 |
3.3.0 常规水质测试 | 第38页 |
3.3.1 出膜率 | 第38-39页 |
3.3.2 海洋酸化对海水青鳉鱼孵化时间影响 | 第39-40页 |
3.4 讨论 | 第40-41页 |
第四章 海水酸化对青鳉鱼性别发育的影响 | 第41-51页 |
4.1 材料与方法 | 第41-42页 |
4.1.1 实验材料 | 第41页 |
4.1.2 实验试剂 | 第41-42页 |
4.1.3 实验仪器 | 第42页 |
4.2 引物设计 | 第42-43页 |
4.3 实验步骤 | 第43-45页 |
4.3.1 冰冻麻醉 | 第43页 |
4.3.2 DNA提取也可以提取基因组DNA | 第43-44页 |
4.3.4 PCR反应体系及程序 | 第44页 |
4.3.5 琼脂糖电泳凝胶 | 第44-45页 |
4.3.6 统计分析方法 | 第45页 |
4.4 结果与分析 | 第45-50页 |
4.4.1 基因型方式判断雌雄 | 第45-46页 |
4.4.2 形态学上观察青鳉鱼性别 | 第46-47页 |
4.4.3 海水酸化对青鳉鱼性别发育的影响 | 第47-50页 |
4.5 讨论 | 第50-51页 |
第五章 海水青鳉鱼性腺发育过程 | 第51-59页 |
5.1 材料与方法 | 第51-54页 |
5.1.1 实验用鱼 | 第51页 |
5.1.2 实验试剂与仪器 | 第51-52页 |
5.1.3 石蜡切片的制备及HE染色 | 第52-54页 |
5.2 结果 | 第54-58页 |
5.3 讨论与分析 | 第58-59页 |
小结与展望 | 第59-61页 |
参考文献 | 第61-69页 |
致谢 | 第69页 |