| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 主要英文缩略词 | 第9-13页 |
| 第1章 引言 | 第13-19页 |
| 第2章 耐辐射奇球菌ppr M、ppr I基因在 293T细胞中的表达 | 第19-41页 |
| 2.1 实验材料及仪器 | 第19-24页 |
| 2.1.1 实验菌株、细胞及其培养条件 | 第19-20页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第20-21页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第21-22页 |
| 2.1.4 培养基及主要试剂的配制 | 第22-24页 |
| 2.2 实验方法 | 第24-35页 |
| 2.2.1 大肠杆菌JM109菌种复苏 | 第24页 |
| 2.2.2 质粒DNA的提取 | 第24-25页 |
| 2.2.3 DNA片段的回收和纯化 | 第25-26页 |
| 2.2.4 大肠杆菌感受态的制备 | 第26页 |
| 2.2.5 大肠杆菌感受态细胞的转化 | 第26-27页 |
| 2.2.6 p EGFP-C1-ppr M重组载体的构建 | 第27-30页 |
| 2.2.7 细胞的复苏培养、传代及冻存 | 第30-31页 |
| 2.2.8 无内毒素质粒提取试剂盒小提质粒 | 第31-32页 |
| 2.2.9 LipofectamineTM 2000 脂质体介导质粒转染细胞 | 第32-33页 |
| 2.2.10 Ppr M、Ppr I融合蛋白在 293T细胞中的共定位 | 第33页 |
| 2.2.11 Western Blot验证Ppr M、Ppr I融合蛋白表达 | 第33-35页 |
| 2.3 结果和分析 | 第35-40页 |
| 2.3.1 p EGFP-C1-ppr M重组载体的构建 | 第35-37页 |
| 2.3.2 ppr M、ppr I基因转染 293T细胞 | 第37-39页 |
| 2.3.3 Ppr M、Ppr I融合蛋白在 293T细胞中的共定位 | 第39-40页 |
| 2.3.4 Western blot验证Ppr M、Ppr I融合蛋白的表达 | 第40页 |
| 2.4 本章小结 | 第40-41页 |
| 第3章 pprM与pprI基因修饰 293T细胞对其辐射抗性的影响 | 第41-51页 |
| 3.1 实验材料及仪器 | 第41-43页 |
| 3.1.1 实验菌株、细胞及其培养条件 | 第41-42页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第42页 |
| 3.1.3 主要仪器设备 | 第42页 |
| 3.1.4 培养基及主要试剂的配制 | 第42-43页 |
| 3.2 实验方法 | 第43-46页 |
| 3.2.1 实验分组 | 第43页 |
| 3.2.2 MTT法检测细胞存活率 | 第43页 |
| 3.2.3 细胞内活性氧（ROS）检测 | 第43-44页 |
| 3.2.4 细胞内丙二醛（MDA）含量检测 | 第44-45页 |
| 3.2.5 细胞内超氧化物歧化酶（SOD）活力检测 | 第45页 |
| 3.2.6 细胞内谷胱甘肽（GSH）活力检测 | 第45-46页 |
| 3.3 实验结果 | 第46-50页 |
| 3.3.1 pprM、pprI基因转染对 293T细胞生存率的影响 | 第46-47页 |
| 3.3.2 pprM、pprI基因转染对细胞内ROS、MDA含量的影响 | 第47-48页 |
| 3.3.3 pprM、pprI基因转染对细胞内 SOD、GSH活力的影响 | 第48-50页 |
| 3.4 本章小结 | 第50-51页 |
| 第4章 讨论 | 第51-55页 |
| 第5章 结论 | 第55-57页 |
| 参考文献 | 第57-63页 |
| 文献综述 | 第63-75页 |
| 参考文献 | 第70-75页 |
| 攻读学位期间的科研成果 | 第75-77页 |
| 致谢 | 第77页 |
